诱导小鼠成纤维细胞为多能干细胞的研究
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 1 绪论 | 第8-14页 |
| ·体细胞重编程 | 第8页 |
| ·iPS细胞的进展与应用 | 第8-13页 |
| ·iPS细胞的进展 | 第9-12页 |
| ·iPS细胞的应用 | 第12-13页 |
| ·本研究目的与意义 | 第13-14页 |
| 2 小鼠iPS诱导因子的克隆 | 第14-24页 |
| ·实验材料 | 第14-16页 |
| ·实验动物、细胞及菌株 | 第14页 |
| ·主要试剂与药品 | 第14-15页 |
| ·溶液的配制 | 第15-16页 |
| ·实验仪器设备 | 第16页 |
| ·实验方法 | 第16-20页 |
| ·小鼠iPS诱导因子的克隆 | 第16-19页 |
| ·小鼠iPS诱导因子的鉴定 | 第19-20页 |
| ·实验结果 | 第20-22页 |
| ·Sox2基因的克隆与序列分析 | 第20页 |
| ·Oct4基因的克隆与序列分析 | 第20-21页 |
| ·Klf4基因的克隆与序列分析 | 第21页 |
| ·c-Myc基因的克隆与序列分析 | 第21-22页 |
| ·讨论 | 第22-23页 |
| ·本章小结 | 第23-24页 |
| 3 逆转录病毒载体的构建 | 第24-30页 |
| ·实验材料 | 第24-25页 |
| ·实验菌株 | 第24页 |
| ·载体信息 | 第24页 |
| ·主要试剂与药品 | 第24-25页 |
| ·溶液的配制 | 第25页 |
| ·实验仪器设备 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-26页 |
| ·逆转录病毒载体的构建 | 第25-26页 |
| ·逆转录病毒载体的鉴定 | 第26页 |
| ·实验结果 | 第26-28页 |
| ·逆转录病毒载体pMXs-Sox2的鉴定 | 第26-27页 |
| ·逆转录病毒载体pMXs-Oct4的鉴定 | 第27页 |
| ·逆转录病毒载体pMXs-Klf4的鉴定 | 第27页 |
| ·逆转录病毒载体pMXs-cMyc的鉴定 | 第27-28页 |
| ·讨论 | 第28-29页 |
| ·本章小结 | 第29-30页 |
| 4 小鼠成纤维细胞的iPS诱导 | 第30-38页 |
| ·实验材料 | 第30-32页 |
| ·实验动物、细胞及质粒 | 第30页 |
| ·主要试剂与药品 | 第30-31页 |
| ·溶液的配制 | 第31-32页 |
| ·实验仪器设备 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-34页 |
| ·逆转录病毒载体的病毒包装与检测 | 第32-33页 |
| ·小鼠成纤维细胞的iPS诱导 | 第33-34页 |
| ·实验结果 | 第34-36页 |
| ·小鼠成纤维细胞 | 第34-35页 |
| ·病毒感染性能的检测 | 第35页 |
| ·诱导细胞培养后的形态特征 | 第35页 |
| ·诱导细胞传代后的形态特征 | 第35-36页 |
| ·诱导细胞的碱性磷酸酶检测 | 第36页 |
| ·讨论 | 第36-37页 |
| ·本章小结 | 第37-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
