| 缩略词表 | 第1-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| ABSTRACT | 第13-16页 |
| 前言 | 第16-22页 |
| 参考文献 | 第19-22页 |
| 第一章 当归芍药散抗阿尔茨海默病有效部位的筛选 | 第22-59页 |
| 第一节 DSS不同提取部位对D-gal所致痴呆小鼠的影响 | 第22-34页 |
| 1 材料 | 第22-24页 |
| ·药品与试剂 | 第22-23页 |
| ·动物 | 第23-24页 |
| ·仪器与设备 | 第24页 |
| 2 方法 | 第24-27页 |
| ·动物分组及给药 | 第24页 |
| ·行为学检测（跳台和水迷宫实验） | 第24-25页 |
| ·跳台实验 | 第24-25页 |
| ·通道式水迷宫实验 | 第25页 |
| ·生化指标的测定 | 第25-27页 |
| ·海马组织匀浆的制备 | 第25-27页 |
| ·海马组织匀浆中GSH含量的测定 | 第25页 |
| ·海马组织匀浆中NO含量的测定 | 第25-26页 |
| ·海马组织匀浆中NOS活力的测定 | 第26页 |
| ·海马组织匀浆中Na~+-K~+-ATP酶活力的测定 | 第26页 |
| ·海马组织匀浆中 β-淀粉样蛋白的检测（ELISA） | 第26-27页 |
| ·脑组织切片的制备 | 第27页 |
| ·TUNEL染色法检测细胞凋亡 | 第27页 |
| ·数据统计 | 第27页 |
| 3 结果 | 第27-34页 |
| ·DSS不同部位对小鼠在跳台实验中学习和记忆能力的影响 | 第27-28页 |
| ·DSS不同部位对小鼠在通道式水迷宫实验中学习和记忆能力的影响 | 第28-30页 |
| ·DSS不同部位对海马组织匀浆中GSH和NO含量的影响 | 第30-31页 |
| ·DSS不同部位对海马组织匀浆中NOS和Na~+-K~+-ATPase活力的影响 | 第31-32页 |
| ·DSS不同部位对海马组织匀浆中Aβ 含量的影响 | 第32-33页 |
| ·DSS不同部位对脑组织中细胞凋亡的影响 | 第33-34页 |
| 4 小结 | 第34页 |
| 第二节 DSS不同提取部位对东莨菪碱所致记忆损伤小鼠的影响 | 第34-41页 |
| 1 材料 | 第34-35页 |
| ·药品与试剂 | 第34页 |
| ·动物 | 第34页 |
| ·仪器与设备 | 第34-35页 |
| 2 方法 | 第35-36页 |
| ·动物分组及给药 | 第35页 |
| ·行为学检测（跳台和水迷宫实验） | 第35页 |
| ·跳台实验 | 第35页 |
| ·通道式水迷宫实验 | 第35页 |
| ·生化指标的测定 | 第35-36页 |
| ·海马组织匀浆的制备 | 第35-36页 |
| ·海马组织匀浆中ACh E活力的测定 | 第36页 |
| ·海马组织匀浆中NO含量和NOS活力的测定 | 第36页 |
| ·脑组织切片的制备 | 第36页 |
| ·HE染色及病理学观察 | 第36页 |
| ·数据统计 | 第36页 |
| 3 结果 | 第36-41页 |
| ·DSS不同部位对小鼠在跳台实验中学习和记忆能力的影响 | 第36-37页 |
| ·DSS不同部位对小鼠在通道式水迷宫实验中学习和记忆能力的影响 | 第37-39页 |
| ·DSS不同部位对海马匀浆中ACh E活力的影响 | 第39页 |
| ·DSS不同部位对海马组织匀浆中NOS活力和NO含量的影响 | 第39-40页 |
| ·DSS不同部位对脑组织病理变化的影响 | 第40-41页 |
| 4 小结 | 第41页 |
| 第三节 DE对D-gal所致痴呆小鼠的作用 | 第41-57页 |
| 1 材料 | 第42页 |
| ·药品与试剂 | 第42页 |
| ·动物 | 第42页 |
| ·仪器与设备 | 第42页 |
| 2 方法 | 第42-46页 |
| ·动物分组及给药 | 第42-43页 |
| ·行为学检测（跳台和Morris水迷宫实验） | 第43-44页 |
| ·跳台实验 | 第43页 |
| ·Morris水迷宫实验 | 第43-44页 |
| ·生化指标的测定 | 第44-46页 |
| ·海马组织匀浆的制备 | 第44-45页 |
| ·海马组织匀浆中SOD活力的测定 | 第44页 |
| ·海马组织匀浆中MDA含量的测定 | 第44页 |
| ·海马组织匀浆中GSH含量的测定 | 第44-45页 |
| ·海马组织匀浆中CP含量的测定 | 第45页 |
| ·海马组织匀浆中NO含量的测定 | 第45页 |
| ·海马组织匀浆中NOS活力的测定 | 第45页 |
| ·脑组织切片的制备 | 第45-46页 |
| ·免疫组织化学染色 | 第46页 |
| ·TUNEL染色法检测细胞凋亡 | 第46页 |
| ·数据统计 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-54页 |
| ·DE对小鼠在跳台实验中记忆能力的影响 | 第46-47页 |
| ·DE对小鼠在Morris水迷宫实验中学习和记忆能力的影响 | 第47-49页 |
| ·DE对海马组织中SOD活力及MDA、CP和GSH含量的的影响 | 第49-50页 |
| ·DE对海马组织匀浆中NOS活力和NO含量的影响 | 第50-51页 |
| ·DE对海马组织中Bcl-2，Bax和Caspase-3 蛋白的影响 | 第51-53页 |
| ·DE对海马组织细胞凋亡的影响 | 第53-54页 |
| 4 小结 | 第54页 |
| 5 讨论 | 第54-57页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
| 第二章 当归芍药散抗阿尔茨海默病有效组分的筛选 | 第59-83页 |
| 第一节 当归芍药散醇提部位成分分析 | 第59-62页 |
| 1 材料 | 第59-60页 |
| ·药品与试剂 | 第59页 |
| ·仪器与设备 | 第59-60页 |
| 2 方法 | 第60页 |
| 3 结果 | 第60-61页 |
| 4 小结 | 第61-62页 |
| 第二节 DE及其组分对乙酰胆碱酯酶的抑制作用 | 第62-65页 |
| 1 材料与仪器 | 第62页 |
| 2 方法 | 第62-63页 |
| ·试剂配制 | 第62-63页 |
| ·样品处理 | 第63页 |
| ·微孔板测定 | 第63页 |
| ·数据统计 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-65页 |
| 4 结论 | 第65页 |
| 第三节 DE及其组分对Aβ_(1-42)诱导的原代神经元损伤的作用 | 第65-81页 |
| 1 材料 | 第65-66页 |
| ·药品与试剂 | 第65页 |
| ·动物 | 第65页 |
| ·仪器设备 | 第65-66页 |
| 2 方法 | 第66-68页 |
| ·溶液配制 | 第66页 |
| ·原代海马神经元的培养 | 第66-67页 |
| ·海马神经元的培养 | 第66-67页 |
| ·神经元的鉴定 | 第67页 |
| ·神经元的药物处理 | 第67-68页 |
| ·MTT法检测细胞活力 | 第68页 |
| ·数据统计 | 第68页 |
| 3 结果 | 第68-80页 |
| ·神经元的鉴定 | 第68-69页 |
| ·最佳Aβ_(1-42)造模浓度的确定 | 第69-70页 |
| ·DE及其不同组分对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第70-80页 |
| ·DE对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第70-71页 |
| ·芍药苷对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第71-72页 |
| ·藁本内酯对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第72-73页 |
| ·芍药内酯苷对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第73-74页 |
| ·没食子酸对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第74-75页 |
| ·阿魏酸对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第75-76页 |
| ·原儿茶酸对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第76-77页 |
| ·川芎内酯I对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第77-78页 |
| ·香草酸对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第78-79页 |
| ·泽泻醇B对Aβ_(1-42)损伤神经元的作用 | 第79-80页 |
| 4 结论 | 第80页 |
| 5 讨论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-83页 |
| 第三章 DE及其有效组分抗AD的机制研究 | 第83-124页 |
| 第一节 芍药苷对Aβ_(1-42)双侧海马注射诱发的AD大鼠的作用 | 第84-98页 |
| 1 材料 | 第84页 |
| ·药品与试剂 | 第84页 |
| ·动物 | 第84页 |
| ·仪器与设备 | 第84页 |
| 2 方法 | 第84-89页 |
| ·动物模型制备及分组 | 第84-85页 |
| ·Aβ_（1-42）寡聚体聚合物溶液的制备 | 第84-85页 |
| ·模型制备 | 第85页 |
| ·分组及给药 | 第85页 |
| ·行为学检测（Morris水迷宫实验） | 第85-86页 |
| ·生化指标的测定 | 第86-87页 |
| ·海马组织匀浆的制备 | 第86-87页 |
| ·海马组织匀浆中SOD和CAT活力、MAD含量的测定 | 第86页 |
| ·海马组织匀浆中Ch AT活性的测定 | 第86页 |
| ·海马组织匀浆中ACh E活性的测定 | 第86-87页 |
| ·脑组织切片的制备 | 第87页 |
| ·免疫组织化学染色 | 第87页 |
| ·RNA提取和RCR分析 | 第87-89页 |
| ·海马组织总RNA提取 | 第87-88页 |
| ·逆转录指标c DNA | 第88页 |
| ·PCR引物序列 | 第88页 |
| ·PCR基本过程 | 第88-89页 |
| ·PCR产物分析 | 第89页 |
| ·数据统计 | 第89页 |
| 3 结果 | 第89-97页 |
| ·Pae对Aβ（1-42）双侧海马内注射诱发的AD大鼠学习记忆能力的影响 | 第89-91页 |
| ·Pae对大鼠海马组织中SOD和CAT活力及MDA含量的影响 | 第91-92页 |
| ·Pae对大鼠海马组织中Ch AT和ACh E活力的影响 | 第92-93页 |
| ·Pae对大鼠海马组织中相关基因的影响 | 第93-95页 |
| ·Pae对大鼠海马组织中MMP-9、TIMP-1 和NGF蛋白表达的影响 | 第95-97页 |
| 4 小结 | 第97-98页 |
| 第二节 DE和Z-藁本内酯对Aβ_(1-42)双侧海马注射诱发的AD大鼠的作用 | 第98-107页 |
| 1 材料 | 第98页 |
| ·药品与试剂 | 第98页 |
| ·动物 | 第98页 |
| ·仪器与设备 | 第98页 |
| 2 方法 | 第98-100页 |
| ·动物模型制备及分组 | 第98-99页 |
| ·Aβ（1-42）寡聚体聚合物溶液的制备 | 第98-99页 |
| ·模型制备 | 第99页 |
| ·分组及给药 | 第99页 |
| ·行为学检测（Morris水迷宫实验） | 第99页 |
| ·生化指标的测定 | 第99页 |
| ·RNA提取和RCR分析 | 第99页 |
| ·数据统计 | 第99-100页 |
| 3 结果 | 第100-106页 |
| ·DE和Lig对Aβ（1-42）双侧海马内注射的AD大鼠学习记忆能力的影响 | 第100-101页 |
| ·DE和Lig对大鼠海马组织中SOD和CAT活力及MDA含量的影响 | 第101-102页 |
| ·DE和Lig对大鼠海马组织中Ch AT和ACh E活力的影响 | 第102-104页 |
| ·DE和Lig对大鼠海马组织中相关基因的影响 | 第104-106页 |
| 4 小结 | 第106-107页 |
| 第三节 DE和芍药苷对Aβ_(1-42)诱导的原代神经元损伤的作用 | 第107-120页 |
| 1 材料 | 第107-108页 |
| ·药品与试剂 | 第107页 |
| ·动物 | 第107页 |
| ·仪器设备 | 第107-108页 |
| 2 方法 | 第108-110页 |
| ·溶液配制 | 第108页 |
| ·海马神经元细胞的原代培养 | 第108页 |
| ·MTT法检测细胞活力 | 第108页 |
| ·LDH的检测 | 第108页 |
| ·流式细胞仪检测细胞内的ROS | 第108-109页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第109页 |
| ·RT-PCR检测NGF、Trk A、MMP-9、TIMP-1 及CREB的表达量 | 第109-110页 |
| ·数据统计 | 第110页 |
| 3 结果 | 第110-116页 |
| ·DE和Pae对Aβ_(1-42)诱导的原代海马神经元活力降低的影响 | 第110-111页 |
| ·DE和Pae对Aβ_(1-42)诱导的原代海马神经元LDH活性的影响 | 第111-112页 |
| ·DE和Pae对Aβ_(1-42)诱导的原代海马神经元ROS含量的影响 | 第112-114页 |
| ·DE和Pae对Aβ_(1-42)诱导的原代海马神经元凋亡情况的影响 | 第114-115页 |
| ·DE和Pae对Aβ_(1-42)诱导的原代海马神经元NGF、Trk A、MMP-9、TIMP-1 及CREB表达量的影响 | 第115-116页 |
| 4 小结 | 第116-117页 |
| 5 讨论 | 第117-120页 |
| 参考文献 | 第120-124页 |
| 第四章 文献综述 | 第124-140页 |
| 参考文献 | 第129-140页 |
| 论文总结 | 第140-141页 |
| 创新点 | 第141-142页 |
| 对论文不足之处和需进一步研究的评述 | 第142-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |
| 个人简历 | 第144-145页 |
| 博士期间发表的论文 | 第145-146页 |
