目录 | 第1-10页 |
摘要 | 第10-13页 |
Abstract | 第13-17页 |
縮略词表 | 第17-18页 |
第一章 文献综述 | 第18-35页 |
1 低温胁迫对植物的影响 | 第18-22页 |
·低温胁迫对细胞膜系统的影响 | 第19页 |
·低温胁迫对植物光合作用的影响 | 第19-20页 |
·低温胁迫对代谢的影响 | 第20-22页 |
2 植物抗寒性的鉴定方法和指标 | 第22-23页 |
3 植物应答低温胁迫的分子机制 | 第23-28页 |
·低温胁迫信号的感知及信号传递 | 第23-24页 |
·植物低温应答的转录调控 | 第24-26页 |
·CBF调控途径 | 第24-25页 |
·不依赖CBF的调控途径 | 第25-26页 |
·转录后调控 | 第26-28页 |
·mRNA加工及由核内运出 | 第26-27页 |
·小RNA(Small RNAs) | 第27-28页 |
·翻译后调控 | 第28页 |
4 基因芯片技术在植物低温逆境研究中的应用 | 第28-29页 |
5 利用基因工程提高植物的抗寒性 | 第29-31页 |
6 番茄耐低温研究进展 | 第31-33页 |
7 本研究的目的、意义及内容 | 第33-35页 |
第二章 耐低温IL系的筛选及低温胁迫下生理应答差异 | 第35-48页 |
1 前言 | 第35-36页 |
2 材料与方法 | 第36-40页 |
·实验材料 | 第36页 |
·植物材料 | 第36页 |
·主要试剂 | 第36页 |
·实验方法 | 第36-40页 |
·耐低温渐渗系的筛选 | 第36-37页 |
·电导率的测定 | 第37页 |
·MDA含量的测定 | 第37页 |
·脯氨酸含量的测定 | 第37-38页 |
·可溶性糖含量的测定 | 第38-39页 |
·SOD活性的测定 | 第39页 |
·CAT活性的测定 | 第39页 |
·APX活性的测定 | 第39-40页 |
·POD活性的测定 | 第40页 |
·叶绿素荧光参数的测定 | 第40页 |
·数据处理 | 第40页 |
3 结果与分析 | 第40-46页 |
·耐低温渐渗系的筛选 | 第40-43页 |
·低温胁迫对番茄幼苗生理生化指标的影响 | 第43-46页 |
·低温胁迫对番茄幼苗细胞膜的影响 | 第43页 |
·低温胁迫对番茄幼苗可溶性溶质的影响 | 第43-44页 |
·低温胁迫对番茄幼苗PSII的影响 | 第44-45页 |
·低温胁迫对番茄幼苗抗氧化酶活性的影响 | 第45-46页 |
4 讨论 | 第46-48页 |
第三章 抗/感番茄在低温胁迫下基因表达差异分析 | 第48-74页 |
1 前言 | 第48-49页 |
2 材料和方法 | 第49-51页 |
·实验材料 | 第49页 |
·植物材料 | 第49页 |
·主要试剂 | 第49页 |
·TOM2芯片 | 第49页 |
·实验方法 | 第49-51页 |
·RNA提取 | 第49-50页 |
·样品RNA荧光标记 | 第50页 |
·芯片杂交与清洗 | 第50页 |
·芯片扫描及数据分析 | 第50页 |
·生物信息学分析 | 第50页 |
·反转录 | 第50-51页 |
·实时荧光定量PCR验证 | 第51页 |
3 结果分析与讨论 | 第51-72页 |
·低温胁迫下三材料基因表达谱的总体特征 | 第51-53页 |
·芯片结果的验证 | 第53-55页 |
·抗感材料间基因表达差异分析 | 第55-57页 |
·LA1777中可能贡献抗寒性的其它差异表达基因 | 第57-58页 |
·GO生物学进程富集分析 | 第58-61页 |
·钙信号途径相关基因 | 第61页 |
·光合相关基因 | 第61-63页 |
·ROS相关基因 | 第63-64页 |
·激素代谢与信号转导 | 第64-66页 |
·转录因子 | 第66-68页 |
·翻译后修饰 | 第68-70页 |
·低温胁迫下显著改变的代谢途径 | 第70-72页 |
4 本章小结 | 第72-74页 |
第四章 差异表达基因ShDHN的功能鉴定 | 第74-94页 |
1 前言 | 第74-75页 |
2 材料与方法 | 第75-78页 |
·实验材料 | 第75页 |
·试剂、菌株和载体 | 第75页 |
·实验方法 | 第75-78页 |
·非生物逆境处理 | 第75-76页 |
·ShDHN的组织及诱导表达分析 | 第76页 |
·目标基因扩增和测序分析 | 第76页 |
·超量表达载体的构建 | 第76页 |
·番茄的遗传转化 | 第76页 |
·转基因植株的阳性检测 | 第76页 |
·转基因植株相对表达量的检测 | 第76-77页 |
·转基因植株苗期抗寒性鉴定 | 第77页 |
·转基因植株苗期抗旱性鉴定 | 第77页 |
·盐及渗透胁迫下的生长实验 | 第77页 |
·ROS组织原位检测 | 第77-78页 |
·相关生理指标的测定 | 第78页 |
·失水率的测定 | 第78页 |
·相对含水量的测定 | 第78页 |
3 结果与分析 | 第78-91页 |
·ShDHN组织及诱导表达分析 | 第78-80页 |
·ShDHN的克隆及序列分析 | 第80-82页 |
·转基因植株的分子检测 | 第82页 |
·超量表达ShDHN提高了番茄的抗逆性 | 第82-89页 |
·超量表达ShDHN提高了番茄的抗寒性 | 第82-86页 |
·超量表达ShDHN提高了番茄的抗旱性 | 第86-88页 |
·超量表达ShDHN提高了幼苗对高盐及渗透胁迫的抗性 | 第88-89页 |
·超量表达ShDHN改变了相关基因的表达 | 第89-91页 |
4 讨论 | 第91-94页 |
·脱水素基因的表达与植株抗性正相关 | 第91-92页 |
·超量表达脱水素基因降低了ROS对细胞膜的伤害 | 第92页 |
·脱水素基因功能的多效性 | 第92-94页 |
第五章 差异表达基因ShCHLP的功能鉴定 | 第94-111页 |
1 前言 | 第94-96页 |
2 材料和方法 | 第96-98页 |
·植物材料 | 第96页 |
·主要试剂、菌株及载体 | 第96页 |
·实验方法 | 第96-98页 |
·各种逆境胁迫处理 | 第96页 |
·ShCHL P组织及诱导表达谱分析 | 第96页 |
·ShCHL P的克隆及序列分析 | 第96页 |
·超量表达载体的构建及遗传转化 | 第96-97页 |
·转基因植株的分子检测 | 第97页 |
·叶盘法分析转基因植株对氧化及高盐的抗性 | 第97页 |
·叶绿素含量的测定 | 第97页 |
·高盐、渗透及氧化胁迫下的生长实验 | 第97页 |
·ROS组织原位检测 | 第97-98页 |
3 结果与分析 | 第98-108页 |
·ShCHL P基因的克隆及序列分析 | 第98-100页 |
·ShCHLP的表达谱分析 | 第100-101页 |
·转基因株系的分子检测 | 第101-102页 |
·CHL P调控叶绿素的生物合成 | 第102-103页 |
·ShCHL P转基因植株的抗逆性分析 | 第103-108页 |
·ShCHL P转基因植株耐盐性分析 | 第103-106页 |
·ShCHL P转基因幼苗对渗透胁迫的抗性分析 | 第106页 |
·ShCHL P转基因幼苗对氧化胁迫的抗性分析 | 第106-108页 |
4 讨论 | 第108-111页 |
·CHL P基因在植物叶绿素生物合成中的作用 | 第108-109页 |
·CHL P基因在植物非生物逆境应答中的作用 | 第109-111页 |
第六章 差异表达转录因子ShNAC的功能鉴定 | 第111-123页 |
1 前言 | 第111-113页 |
2 材料与方法 | 第113-114页 |
·植物材料 | 第113页 |
·主要试剂、菌株及载体 | 第113页 |
·实验方法 | 第113-114页 |
·ShNAC组织及诱导表达谱分析 | 第113页 |
·ShNAC基因扩增和序列分析 | 第113页 |
·超量表达载体的构建及转基因株系的分子检测 | 第113-114页 |
·转基因植株苗期抗逆性鉴定 | 第114页 |
·相关生理指标的测定 | 第114页 |
3 结果与分析 | 第114-120页 |
·ShNAC基因的克隆及序列分析 | 第114-116页 |
·ShNAC组织及诱导表达谱分析 | 第116-117页 |
·转基因植株的抗逆性鉴定 | 第117-120页 |
·超量表达ShNAC转基因番茄植株对干旱更敏感 | 第118-120页 |
·超量表达ShNAC转基因番茄植株对低温更敏感 | 第120页 |
4 讨论 | 第120-123页 |
·ShNAC负调控番茄的生长发育 | 第120-121页 |
·ShNAC负调控番茄的抗逆性 | 第121-123页 |
第七章 全文总结 | 第123-125页 |
参考文献 | 第125-155页 |
附录 | 第155-167页 |
作者简介 | 第167-168页 |
致谢 | 第168页 |