| 英文缩略词对照表 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-16页 |
| 英文摘要 | 第16-22页 |
| 1 前言 | 第22-26页 |
| 2 实验材料 | 第26-30页 |
| ·动物 | 第26页 |
| ·类风湿关节炎(RA)患者外周血 | 第26页 |
| ·药物 | 第26页 |
| ·试剂 | 第26-29页 |
| ·仪器与设备 | 第29-30页 |
| 3 实验方法 | 第30-40页 |
| ·大鼠佐剂性关节炎(AIA)模型的诱导 | 第30页 |
| ·动物分组 | 第30页 |
| ·给药时间和给药方法 | 第30页 |
| ·关节炎指数的评判 | 第30-31页 |
| ·继发侧关节肿胀度测定 | 第31页 |
| ·组织病理学的评价 | 第31页 |
| ·ELISA法检测血清和滑膜中TNF-α、VEGF、血管紧张素Ⅱ的水平 | 第31-32页 |
| ·Western blot法检测脾脏、滑膜中AT1R、AT2R蛋白的表达 | 第32-35页 |
| ·分离AIA大鼠外周血单核细胞 | 第35页 |
| ·Western blot法检测单核细胞AT1R、AT2R蛋白表达 | 第35-36页 |
| ·CCK-8法检测滑膜细胞的增殖 | 第36页 |
| ·IHC检测滑膜组织CD11b的表达 | 第36页 |
| ·Transwell法检测AT2R激动剂(CGP42112)对单核细胞趋化的影响 | 第36-37页 |
| ·Western blot法检测CGP42112对单核细胞AT1R、AT2R蛋白表达的影响 | 第37页 |
| ·分离RA患者和健康志愿者的外周血单个核细胞(PBMCs) | 第37-38页 |
| ·qPCR检测RA患者PBMCs中AT1R、AT2R的mRNA变化 | 第38-39页 |
| ·流式细胞术检测RA患者PBMCs上AT1R、AT2R表达变化 | 第39页 |
| ·统计分析 | 第39-40页 |
| 4 实验结果 | 第40-56页 |
| ·大鼠AIA模型的建立 | 第40页 |
| ·AIA大鼠多发性关节炎指数的变化及氯沙坦的作用 | 第40-41页 |
| ·AIA大鼠滑膜炎病理表现的变化及氯沙坦的作用 | 第41-42页 |
| ·大鼠血清和滑膜中细胞因子水平变化及氯沙坦的作用 | 第42-43页 |
| ·大鼠脾脏、滑膜中AT1R、AT2R蛋白表达变化及氯沙坦的作用 | 第43-45页 |
| ·AIA大鼠AT1R、AT2R蛋白表达与多发性关节炎指数的相关性 | 第45-46页 |
| ·体外培养的大鼠单核细胞AT1R、AT2R蛋白表达变化 | 第46-47页 |
| ·RA患者PBMCs中AT1R、AT2R mRNA的变化 | 第47-48页 |
| ·RA患者PBMCs的AT1R、AT2R表达变化 | 第48页 |
| ·关节腔注射CGP42112对AIA大鼠关节炎指数的作用 | 第48-49页 |
| ·关节腔注射CGP42112对AIA大鼠关节肿胀度的作用 | 第49-50页 |
| ·关节腔注射CGP42112对AIA大鼠滑膜炎病理表现的作用 | 第50-52页 |
| ·关节腔注射CGP42112对AIA大鼠滑膜细胞增殖的作用 | 第52页 |
| ·关节腔注射CGP42112对AIA大鼠滑膜组织CD11b阳性细胞浸润的作用 | 第52-53页 |
| ·CGP42112对单核细胞AT1R、AT2R表达的作用 | 第53-54页 |
| ·CGP42112对单核细胞活性的抑制作用 | 第54页 |
| ·CGP42112对单核细胞趋化的抑制作用 | 第54-56页 |
| 5 讨论 | 第56-62页 |
| ·AT2R参与AIA和RA的疾病病程, AIA大鼠和RA患者AT2R表达升高,高表达的AT2R与大鼠多发性关节炎的缓解密切相关 | 第56-58页 |
| ·CGP42112对AIA大鼠的治疗作用提示激活AT2R可在AIA病程中发挥缓解炎症免疫反应的作用 | 第58-59页 |
| ·CGP42112上调AT2R的表达,激动AT2R可抑制单核细胞活性 | 第59-60页 |
| ·展望 | 第60-62页 |
| 6 结论 | 第62-63页 |
| 7 不足之处和下一步工作 | 第63-64页 |
| 8 参考文献 | 第64-74页 |
| 附录 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 综述 | 第78-93页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
