| 英文缩略词表 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 前言 | 第17-21页 |
| 1 实验材料 | 第21-24页 |
| ·动物 | 第21页 |
| ·药物与试剂 | 第21-23页 |
| ·仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2 实验方法 | 第24-37页 |
| ·DCs 的分离与培养 | 第24页 |
| ·DCs 的鉴定 | 第24-25页 |
| ·对 DCs 的干预 | 第25页 |
| ·DCs 的表型及功能检测 | 第25-27页 |
| ·大鼠 AA 模型的制备 | 第27页 |
| ·实验分组及给药方法 | 第27页 |
| ·大鼠足爪肿胀度的测定 | 第27页 |
| ·关节病理学观察 | 第27页 |
| ·胸腺指数、脾脏指数的测定 | 第27页 |
| ·淋巴细胞增殖反应的检测 | 第27-28页 |
| ·大鼠 FLS 的分离培养 | 第28页 |
| ·FLS 增殖、分泌功能的检测 | 第28-29页 |
| ·FLS 内 cAMP 水平的检测 | 第29页 |
| ·流式细胞术检测 FLS 细胞表面β2-AR 的表达 | 第29页 |
| ·免疫组化法检测 DCs 和 FLS 上β2-AR 的表达 | 第29-30页 |
| ·免疫荧光法检测 FLS 细胞表面β2-AR 的表达 | 第30-31页 |
| ·Western blot 检测β2-AR、GRK2、β-arrestin2、p-ERK 的表达 | 第31-33页 |
| ·QRT-PCR 检测 DCs 上β2-AR mRNA、GRK2 mRNA 的表达 | 第33-36页 |
| ·统计学分析 | 第36-37页 |
| 3 实验结果 | 第37-63页 |
| ·β-AR 信号对 AA 大鼠 DCs 功能的影响 | 第37-54页 |
| ·DCs 的培养与鉴定 | 第37-38页 |
| ·异丙肾上腺素（ISO）对 DCs 表型及功能的影响 | 第38-41页 |
| ·β-AR 选择性拮抗剂对 ISO 处理的 DCs 表型及功能的影响 | 第41-43页 |
| ·β_2-AR 在 AA 大鼠骨髓源 DCs 中的表达分布 | 第43-44页 |
| ·β_2-AR 激动药灌胃对 AA 大鼠的影响 | 第44-50页 |
| ·AA 大鼠骨髓源 DCs 对 ISO 反应的差异 | 第50-51页 |
| ·AA 大鼠骨髓源 DCs 表型和胞膜β2-AR、GRK2 及其 mRNA 在AA 病程中的变化 | 第51-54页 |
| ·β-AR 信号对 AA 大鼠 FLS 功能的影响 | 第54-63页 |
| ·ISO 对正常大鼠 FLS 增殖能力的影响 | 第54页 |
| ·ISO 对正常大鼠 FLS 分泌细胞因子水平的影响 | 第54-55页 |
| ·β-AR 选择性拮抗剂对 ISO 处理的 FLS 增殖能力的影响 | 第55-56页 |
| ·ISO 对正常和 AA 大鼠 FLS 增殖能力影响的差异 | 第56-57页 |
| ·β2-AR 在正常和 AA 大鼠 FLS 的表达、分布 | 第57-58页 |
| ·流式细胞术检测 ISO 对正常及 AA 大鼠 FLS 胞膜β2-AR 表达的影响 | 第58-60页 |
| ·Western blot 检测 AA 大鼠 FLS 胞膜β2-AR、GRK2、β-arrestin2的表达变化 | 第60-61页 |
| ·ISO 对正常及 AA 大鼠 FLS 胞内 cAMP 水平的影响 | 第61页 |
| ·ISO 对正常及 AA 大鼠 FLS p-ERK 水平的影响 | 第61-63页 |
| 4 讨论 | 第63-70页 |
| ·DCs 和 FLS 功能的异常参与了 RA 炎症免疫反应的病理过程 . | 第63-64页 |
| ·β_2-AR 信号是调节 DCs 和 FLS 功能的重要信号通路 | 第64-67页 |
| ·β_2-AR 信号异常是 AA 大鼠 DCs 和 FLS 功能改变的重要原因 | 第67-70页 |
| 结论 | 第70-71页 |
| 本研究创新点 | 第71页 |
| 下一步工作设想 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-82页 |
| 附录 | 第82-85页 |
| 致谢 | 第85-87页 |
| 综述 肾上腺素受体及其信号在类风湿关节炎中的研究进展 | 第87-98页 |
| 参考文献 | 第93-98页 |
