| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-34页 |
| ·NOVS简介 | 第17-20页 |
| ·NoVs基因组结构 | 第17-19页 |
| ·NoVs的分类 | 第19页 |
| ·我国NoVs的流行状况 | 第19-20页 |
| ·贝类中的NOVS | 第20-23页 |
| ·贝类中NoVs的来源 | 第20-21页 |
| ·贝类引起的NoVs暴发 | 第21-23页 |
| ·组织血型抗原研究进展 | 第23-26页 |
| ·NoVs受体人类组织血型抗原研究进展 | 第24-25页 |
| ·牡蛎组织血型抗原研究进展 | 第25-26页 |
| ·食源性微生物风险评估概述 | 第26-33页 |
| ·微生物风险评估的基本组成 | 第27页 |
| ·微生物风险评估的分类 | 第27-28页 |
| ·食源性微生物风险评估的基本原则 | 第28页 |
| ·食源性致病微生物风险评估的程序 | 第28-30页 |
| ·国内外食源性致病微生物风险评估的研究进展 | 第30-32页 |
| ·食源性致病微生物定量风险评估存在的问题 | 第32-33页 |
| ·对食源性致病微生物定量风险评估的几点建议 | 第33页 |
| ·本文研究的目的和意义 | 第33-34页 |
| 第二章 贝类中 NOVS 富集方法的建立与优化 | 第34-46页 |
| ·实验材料 | 第34-35页 |
| ·实验菌株 | 第34页 |
| ·样品 | 第34页 |
| ·实验试剂 | 第34-35页 |
| ·实验仪器 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-39页 |
| ·贝类中 NoVs 富集方法的比较 | 第35-37页 |
| ·病毒RNA提取 | 第37页 |
| ·引物序列 | 第37页 |
| ·RT-PCR方法 | 第37-38页 |
| ·Real-time RT-PCR方法 | 第38-39页 |
| ·数据分析 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-44页 |
| ·荧光定量方法的特异性和灵敏度 | 第39-40页 |
| ·定量方法的标准曲线 | 第40页 |
| ·四种方法对GI.3型NoV的富集效率 | 第40-42页 |
| ·四种方法对GII.4型NoV的富集效率 | 第42-44页 |
| ·四种方法对GI.3和GII.4型NoVs富集效率的比较 | 第44页 |
| ·讨论与小结 | 第44-46页 |
| 第三章 黄渤海贝类中NOVS的污染状况调查 | 第46-53页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·样品 | 第46-47页 |
| ·实验仪器 | 第47页 |
| ·实验试剂 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-49页 |
| ·样品处理方法 | 第47-48页 |
| ·病毒富集方法 | 第48页 |
| ·RNA提取方法 | 第48页 |
| ·病毒检测方法 | 第48页 |
| ·病毒分型方法 | 第48-49页 |
| ·数据分析 | 第49页 |
| ·结果与分析 | 第49-51页 |
| ·不同贝类中 NoVs 的检出情况 | 第49页 |
| ·不同季节贝类中 NoVs 污染状况 | 第49-50页 |
| ·贝类中NoV的定量检测 | 第50-51页 |
| ·贝类中NoVs的分型 | 第51页 |
| ·讨论与小结 | 第51-53页 |
| 第四章 贝类中NOVS的定量风险评估 | 第53-76页 |
| ·资料来源 | 第53-55页 |
| ·样品资料 | 第53页 |
| ·贝类摄入量资料 | 第53-54页 |
| ·人口资料 | 第54页 |
| ·风险评估方法 | 第54-55页 |
| ·结果与分析 | 第55-71页 |
| ·危害识别 | 第55-58页 |
| ·危害描述 | 第58-60页 |
| ·暴露评估 | 第60-68页 |
| ·风险描述 | 第68-71页 |
| ·风险管理 | 第71-73页 |
| ·污染来源的控制 | 第71-72页 |
| ·贝类产品的控制 | 第72页 |
| ·切断其他传播途径 | 第72页 |
| ·风险管理措施 | 第72-73页 |
| ·贝类中 NOVS风险评估的不确定性分析 | 第73-74页 |
| ·风险评估的确定性 | 第73页 |
| ·风险评估的不确定性 | 第73-74页 |
| ·讨论与小结 | 第74-76页 |
| 第五章 牡蛎组织血型抗原的检测 | 第76-84页 |
| ·牡蛎 A 型组织血型抗原 ELISA 方法的建立 | 第76-83页 |
| ·试验材料 | 第76-77页 |
| ·试验方法 | 第77-79页 |
| ·结果与分析 | 第79-83页 |
| ·讨论与小结 | 第83-84页 |
| 第六章 牡蛎组织血型抗原相关基因的克隆与原核表达 | 第84-102页 |
| ·牡蛎 HBGAS相关基因的 PCR 扩增 | 第84-88页 |
| ·试验材料 | 第84-85页 |
| ·实验方法 | 第85-87页 |
| ·结果分析 | 第87-88页 |
| ·RACE 法扩增牡蛎 HBGAS合成相关基因及其生物信息学分析 | 第88-95页 |
| ·试验材料 | 第88页 |
| ·试验试剂 | 第88-89页 |
| ·实验方法 | 第89-91页 |
| ·结果分析 | 第91-95页 |
| ·FUT3 基因的原核表达 | 第95-100页 |
| ·试验材料 | 第95页 |
| ·试验试剂 | 第95页 |
| ·试验仪器 | 第95-96页 |
| ·试验方法 | 第96-98页 |
| ·试验结果 | 第98-100页 |
| ·小结 | 第100-102页 |
| 第七章 温度对牡蛎组织血型抗原FUT2基因的表达调控 | 第102-111页 |
| ·牡蛎 HBGA 合成关键基因 FUT2REAL-TIME PCR检测方法的建立 | 第102-109页 |
| ·试验材料 | 第102页 |
| ·试验仪器 | 第102-103页 |
| ·试验方法 | 第103-104页 |
| ·结果分析 | 第104-109页 |
| ·小结 | 第109-111页 |
| 结论 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-127页 |
| 致谢 | 第127-128页 |
| 在学期间发表的学术论文及著作 | 第128页 |
