| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 本文缩写词表 | 第8-9页 |
| Ⅰ.前言 | 第9-24页 |
| 1 水稻转化方法及其评价 | 第9-18页 |
| ·基因枪法 | 第9-14页 |
| ·农杆菌介导法 | 第14-17页 |
| ·PEG转化法 | 第17页 |
| ·电击法 | 第17-18页 |
| ·花粉管通道法 | 第18页 |
| 2 化学诱导表达系统的研究 | 第18-23页 |
| ·四环素诱导表达系统 | 第19-20页 |
| ·乙醇诱导系统 | 第20-21页 |
| ·类固醇(steroid)诱导系统 | 第21-22页 |
| ·地塞米松诱导和四环素抑制系统 | 第22-23页 |
| 3.研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| Ⅱ.材料和方法 | 第24-35页 |
| ·实验材料 | 第24-28页 |
| ·供试水稻品种 | 第24页 |
| ·质粒和基因 | 第24-25页 |
| ·培养基 | 第25-26页 |
| ·实验试剂 | 第26-28页 |
| ·主要仪器 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-35页 |
| ·水稻愈伤组织的诱导 | 第28-29页 |
| ·SDS碱裂解法制备质粒DNA | 第29页 |
| ·植物总oNA的小量提取及纯化(SDS法，用于PCR、southern杂交) | 第29-30页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第30-31页 |
| ·基因枪转化 | 第31-32页 |
| ·PCR检测 | 第32页 |
| ·Southern印迹分析 | 第32-35页 |
| Ⅲ.结果与分析 | 第35-44页 |
| ·质粒的PCR检测 | 第35页 |
| ·水稻愈伤组织诱导的研究 | 第35-38页 |
| ·不同培养基对成熟胚愈伤组织状态的影响 | 第35-36页 |
| ·继代培养基中添加ABA对愈伤组织继代的影响 | 第36-37页 |
| ·不同外植体愈伤组织诱导率 | 第37-38页 |
| ·GUS基因的组织化学染色 | 第38页 |
| ·抗性植株的获得 | 第38-39页 |
| ·愈伤组织筛选条件的确定 | 第38-39页 |
| ·不同靶材料对植株再生频率及转化率的影响 | 第39页 |
| ·转基因水稻R_0代再生植株的分子检测 | 第39-44页 |
| ·转基因水稻R_0代再生植株的PCR分析 | 第40-41页 |
| ·目的基因的共转化效率 | 第41-42页 |
| ·Southern杂交分析 | 第42-44页 |
| Ⅳ.讨论 | 第44-46页 |
| ·水稻材料的基因型 | 第44页 |
| ·外植体来源 | 第44-45页 |
| ·继代过程中添加ABA对愈伤组织的影响 | 第45页 |
| ·通过四环素诱导表达系统创造水稻新型两用核不育系的研究 | 第45-46页 |
| 彩色图版及说明 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者介绍 | 第54页 |