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PMS肝气逆证大鼠含药血清对体外原代培养大鼠大脑皮层神经元活力及5-HT1A受体影响

引言第1-16页
实验一 含药血清芍药苷浓度测定及其制备第16-27页
 一、实验材料第16页
  (一) 实验仪器第16页
  (二) 药品与试剂第16页
  (三) 实验动物第16页
 二、实验方法第16-19页
  (一) 含药血清芍药苷含量测定第16-18页
   1.色谱条件第16-17页
   2.标准液配制第17页
   3.血清样品预处理方法第17页
   4.芍药苷标准曲线制备第17页
   5.日内、日间精密度测定第17页
   6.回收率测定第17页
   7.检测限测定第17页
   8.血清样品制备方法第17-18页
  (二) 含药血清制备第18-19页
   1.造模方法第18页
   2.分组与给药第18-19页
 三、实验结果第19-23页
  (一) HPLC色谱图第19页
  (二) 标准曲线第19-20页
  (三) 日内、日间精密度第20-21页
  (四) 回收率第21-22页
  (五) 检测限第22页
  (六) 含药血清中芍药苷浓度随时间的变化第22-23页
 四、讨论第23-27页
  (一) RP-HPLC测定方法确定第23页
  (二) 指标选择第23页
  (三) 实验动物模型选择第23-24页
  (四) 给药剂量确定第24-25页
  (五) 取血方案确定第25页
  (六) 血清处理第25-26页
  (七) 含药血清芍药苷浓度随时间的变化第26-27页
实验二 胚胎大鼠大脑皮层神经元体外原代培养第27-34页
 一、实验材料第27页
  (一) 实验仪器第27页
  (二) 药物与试剂第27页
  (三) 实验动物第27页
 二、实验方法第27-29页
  (一) 大鼠大脑皮层神经元培养第27-29页
   1.培养方法第27-28页
   2.吉姆萨染色观察神经元形态第28页
   3.免疫荧光染色法鉴定神经元第28-29页
 三、实验结果第29-30页
  (一) 神经元形态学观察第29-30页
  (二) MAP_2标记鉴别神经元第30页
 四、讨论第30-34页
  (一) 神经元鉴别方法第30-31页
  (二) 影响大鼠脑皮层神经元体外原代培养因素第31-34页
   1.大鼠胎龄第31页
   2.胰蛋白酶消化第31-32页
   3.神经元纯化第32页
   4.培养条件第32-33页
   5.杂质细胞干扰第33-34页
实验三 含药血清对体外原代培养大鼠大脑皮层神经元活力及5-HT1A受体影响第34-42页
 一、实验材料第34页
  (一) 实验仪器第34页
  (二) 药物与试剂第34页
  (三) 实验动物第34页
 二、实验方法第34-36页
  (一) 胚胎大鼠大脑皮层神经元培养第34页
  (二) 神经元活力测定第34-35页
  (三) 免疫荧光细胞化学染色法测定神经元5-HT1A受体含量与分布第35-36页
   1.改良免疫荧光染色法测定神经元5-HT1A受体含量第35-36页
   2.碘化丙碇标记神经元细胞核第36页
 三、实验结果第36-38页
  (一) 神经元活力测定结果第36-37页
  (二) 体外原代培养大鼠大脑皮层神经元5-HT1A受体的变化第37-38页
   1.体外原代培养大鼠大脑皮层神经元5-HT1A受体分布第37页
   2.体外原代培养大鼠大脑皮层神经元5-HT1A受体表达量影响第37-38页
 四、讨论第38-42页
  (一) 反应系中血清添加量第38-39页
  (二) 含药血清对体外原代培养大鼠大脑皮层神经元活力影响第39页
  (三) 含药血清对体外原代培养大鼠大脑皮层神经元5-HT1A受体表达影响第39-42页
讨论第42-46页
 一、肝主疏泄与情志调节第42-43页
 二、WPD胶囊组方分析及治疗PMS肝气逆证依据第43-44页
 三、问题与展望第44-46页
结语第46-47页
参考文献第47-53页
综述第53-70页
附录第70-75页
致谢第75页

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