目录 | 第1-2页 |
独创性说明 | 第2页 |
关于论文使用授权的说明 | 第2-3页 |
摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-9页 |
第一章 引言 | 第9-15页 |
·防御素基因工程研究进展 | 第9-14页 |
·防御素简介 | 第9页 |
·用低等微生物表达防御素的研究 | 第9-10页 |
·用原核微生物表达防御素的研究 | 第9-10页 |
·用真核微生物表达防御素的研究 | 第10页 |
·防御素基因转化高等植物的研究 | 第10-11页 |
·防御素基因转化烟草的研究 | 第10页 |
·转基因拟南芥的研究 | 第10-11页 |
·转基因土豆的研究 | 第11页 |
·其它转基因植物 | 第11页 |
·用动物细胞表达防御素的研究 | 第11-12页 |
·用COS-7细胞表达防御素的研究 | 第11页 |
·人α防御素HNP1转导气管上皮细胞的研究 | 第11-12页 |
·转基因蚊子的研究 | 第12页 |
·防御素转基因物种小结 | 第12-13页 |
·防御素基因工程研究现状与前景 | 第13-14页 |
·本研究的目的和意义 | 第14-15页 |
第二章 兔防御素基因的原核表达与蛋白纯化 | 第15-30页 |
·前言 | 第15页 |
·实验材料 | 第15-16页 |
·菌株与质粒 | 第15页 |
·酶和主要试剂 | 第15页 |
·PCR引物 | 第15页 |
·培养基 | 第15-16页 |
·仪器设备 | 第16页 |
·实验方法 | 第16-25页 |
·载体构建中的相关方法 | 第16-18页 |
·小量碱法提取质粒 | 第16-17页 |
·质粒的酶切 | 第17页 |
·酶切片段的去磷酸化 | 第17页 |
·目的片段的回收 | 第17页 |
·目的片段的连接 | 第17页 |
·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第17页 |
·反应物的转化 | 第17-18页 |
·PCR初步筛选重组转化子 | 第18页 |
·酶切检测重组载体及目的片段的正反连接 | 第18页 |
·原核表达载体pTYB_2-NP1,pTYB_(12)-NP1,pET-32a-NP1的构建 | 第18-22页 |
·重组质粒转化表达菌株大肠杆菌(E.coli)BL21 | 第22页 |
·转基因大肠杆菌(E.coli)BL21阳性克隆的诱导表达 | 第22页 |
·转基因大肠杆菌可溶性总蛋白的提取 | 第22页 |
·过层析柱纯化目的蛋白 | 第22-23页 |
·蛋白透析及浓缩 | 第23页 |
·Tris-Tricine蛋白电泳检测目的蛋白 | 第23-25页 |
·实验结果与分析 | 第25-28页 |
·重组载体pTYB_2-NP1,pTYB_(12)-NP1,pET-32a-NP1的构建 | 第25-28页 |
·PCR初步筛选重组转化子实验结果 | 第25-26页 |
·酶切检测重组载体及目的片段的正反连接 | 第26-28页 |
·Tris-Tricine蛋白电泳检测目的蛋白实验结果 | 第28页 |
·本章小结与讨论 | 第28-30页 |
·蛋白表达与纯化 | 第28页 |
·目的基因翻译后的修饰 | 第28-29页 |
·防御素的空间结构与生物学活性的关系 | 第29-30页 |
第三章 防御素基因的真核表达及蛋白纯化研究 | 第30-50页 |
·前言 | 第30页 |
·实验材料 | 第30-31页 |
·藻种 | 第30页 |
·菌种和质粒 | 第30页 |
·酶和试剂 | 第30页 |
·培养基 | 第30-31页 |
·PCR引物 | 第31页 |
·实验方法 | 第31-41页 |
·载体构建中的相关方法 | 第31-32页 |
·蓝白斑筛选 | 第31-32页 |
·其它方法: | 第32页 |
·防御素小球藻表达载体pBinU-Omega-HisNP1、pBinNRⅠ-Omega-HisNP1、pBinNRⅡ-Omega-HisNP1、pBinNRⅠpro-HisNP1、pBinNRⅡpro-HisNP1的构建 | 第32-36页 |
·小球藻pBinU-Omega-HisNP1、pBinNRⅠ-Omega-HisNP1、pBinNRⅡ-Omega-HisNP1的构建 | 第32页 |
·小球藻表达载体pBinNRpro-HisNP1的构建 | 第32-36页 |
·小球藻的电激转化 | 第36页 |
·小球藻总DNA提取及PCR检测 | 第36-37页 |
·小球藻总DNA的提取(改良CTAB法) | 第36-37页 |
·转基因小球藻的PCR检测 | 第37页 |
·转基因小球藻Southern点杂交检测 | 第37-39页 |
·预杂交 | 第37-38页 |
·探针标记 | 第38页 |
·杂交和压片 | 第38-39页 |
·转基因小球藻可溶性总蛋白的提取 | 第39页 |
·转基因小球藻可溶性总蛋白抑菌分析 | 第39页 |
·五种不同启动子的活性比较 | 第39页 |
·利用亲和层析纯化目的蛋白 | 第39-40页 |
·Tris-Tricine蛋白电泳检测目的蛋白 | 第40-41页 |
·经层析纯化的目的蛋白活性检测 | 第41页 |
·结果与分析 | 第41-49页 |
·小球藻pBinU-Omega-HisNP1、pBinNRⅠ-Omega-HisNP1、pBinNRⅡ-Omega-HisNP1、pBinNRⅠpro-HisNP1、pBinNRⅡpro-HisNP1表达载体的构建 | 第41-44页 |
·pBinU-Omega-HisNP1、pBinNRⅠ-Omega-HisNP1、pBinNRⅡ-Omega-HisNP1表达载体的构建 | 第41-42页 |
·pBinNRⅠpro-HisNP1、pBinNRⅡpro-HisNP1表达载体的构建 | 第42-44页 |
·用载体pBinU-Omega-HisNP1、pBinNRⅠ-Omega-HisNP1、pBinNRⅡ-Omega-HisNP1、pBinNRⅠpro-HisNP1、pBinNRⅡpro-HisNP1转化小球藻 | 第44-45页 |
·转基因小球藻的PCR检测 | 第45页 |
·转基因小球藻的Southern点杂交 | 第45-46页 |
·转基因小球藻总蛋白提取液的抑菌分析 | 第46-47页 |
·五种不同启动子的活性比较 | 第47-48页 |
·Tris-Tricine蛋白电泳检测目的蛋白 | 第48页 |
·经层析纯化的目的蛋白活性检测 | 第48-49页 |
·本章小结 | 第49-50页 |
第四章 结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-54页 |
个人简介 | 第54-55页 |
导师简介 | 第55-56页 |
致谢 | 第56页 |