IPT基因遗传转化谷秆两用稻的研究
| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 本文主要缩写词 | 第10-11页 |
| Ⅰ 文献综述 | 第11-25页 |
| 1 植物叶片衰老及其分子遗传调控 | 第11-19页 |
| ·植物叶片衰老问题研究的意义 | 第11页 |
| ·叶片衰老的调节 | 第11-12页 |
| ·叶片衰老相关基因及其调控机制 | 第12-15页 |
| ·延缓叶片衰老的分子遗传调控 | 第15-19页 |
| 2 水稻遗传转化研究进展 | 第19-24页 |
| ·水稻遗传转化受体系统的研究 | 第19-21页 |
| ·水稻遗传转化的主要方法 | 第21-23页 |
| ·水稻遗传转化技术的应用 | 第23-24页 |
| 3 本项目研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| Ⅱ 谷秆两用稻高频再生体系和遗传转化体系的建立 | 第25-34页 |
| 1 材料与方法 | 第25-27页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·植物材料 | 第25页 |
| ·菌株与质粒 | 第25页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第25页 |
| ·培养基 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-27页 |
| ·谷秆两用稻再生体系的建立 | 第26页 |
| ·谷秆两用稻成熟胚的组织培养及植株再生 | 第26页 |
| ·谷秆两用稻幼胚的组织培养及植株再生 | 第26页 |
| ·农杆菌介导的谷秆两用稻遗传转化体系的建立 | 第26-27页 |
| ·农杆菌的培养及其介导的水稻转化 | 第26-27页 |
| ·GUS活性的组织化学染色分析 | 第27页 |
| 2 结果与分析 | 第27-31页 |
| ·谷秆两用稻高频再生体系的建立 | 第27-29页 |
| ·不同外植体对愈伤诱导的影响 | 第27页 |
| ·诱导培养基种类对愈伤诱导的影响 | 第27-28页 |
| ·继代次数对愈伤分化的影响 | 第28页 |
| ·分化培养基中不同的激素配比对愈伤分化的影响 | 第28-29页 |
| ·谷秆两用稻遗传转化体系的建立 | 第29-31页 |
| ·菌液浓度对瞬时表达率的影响 | 第29-30页 |
| ·愈伤组织预培养天数对瞬时表达率的影响 | 第30页 |
| ·共培养时间对瞬时表达率的影响 | 第30-31页 |
| ·添加不同的乙酰丁香酮浓度对瞬时表达率的影响 | 第31页 |
| 3 讨论 | 第31-34页 |
| Ⅲ IPT基因在谷秆两用稻中的转化及分子检测 | 第34-45页 |
| 1 材料与方法 | 第34-37页 |
| ·实验材料 | 第34-35页 |
| ·植物材料 | 第34页 |
| ·菌株与质粒 | 第34页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第34-35页 |
| ·水稻遗传转化培养基 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-37页 |
| ·冻融法将携带有IPT基因的质粒导入农杆菌 | 第35页 |
| ·谷秆两用稻胚性愈伤的诱导与继代 | 第35-36页 |
| ·谷秆两用稻潮霉素本底抗性测定 | 第36页 |
| ·农杆菌介导的水稻转化 | 第36页 |
| ·植株再生及移栽 | 第36页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第36-37页 |
| ·PCR检测 | 第36-37页 |
| ·报告基因GUS的检测 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-42页 |
| ·质粒PCMLA35-1导入农杆菌 | 第37-38页 |
| ·潮霉素本底抗性的测定 | 第38-39页 |
| ·水稻遗传转化与植株再生 | 第39-41页 |
| ·转基因植株的PCR鉴定 | 第41页 |
| ·转基因植株的组织化学法鉴定 | 第41-42页 |
| 3 讨论 | 第42-45页 |
| 附件 | 第45-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
