狗牙根种质资源的RAPD分析
| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第7-8页 |
| 2 文献综述 | 第8-18页 |
| 3 材料与方法 | 第18-28页 |
| ·实验材料 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-28页 |
| ·样本采集 | 第19页 |
| ·狗牙根叶片DNA的提取 | 第19-24页 |
| ·提取方法的初步选择 | 第19-22页 |
| ·CTAB法 | 第19-21页 |
| ·试剂 | 第19-20页 |
| ·操作步骤 | 第20-21页 |
| ·SDS法 | 第21-22页 |
| ·试剂 | 第21页 |
| ·操作步骤 | 第21-22页 |
| ·DNA浓度和质量的检测 | 第22页 |
| ·电泳检测 | 第22页 |
| ·紫外分光光度计检测 | 第22页 |
| ·SDS法的优化 | 第22-24页 |
| ·提取缓冲液的成分的确定 | 第23页 |
| ·65℃水浴时间对的确定 | 第23页 |
| ·加入KAC后的冰浴时间的确定 | 第23页 |
| ·酚/氯仿的抽提次数的确定 | 第23-24页 |
| ·RAPD扩增体系的建立 | 第24-27页 |
| ·药品试剂 | 第24页 |
| ·RAPD扩增体系的建立 | 第24-27页 |
| ·最佳预变性温度及时间的确定 | 第24-25页 |
| ·最佳变性温度及时间的确定 | 第25页 |
| ·最佳退火温度及时间的确定 | 第25页 |
| ·最佳循环次数的确定 | 第25-26页 |
| ·最佳Mg~(2+)终浓度的确定 | 第26页 |
| ·最佳DNA模板用量的确定 | 第26页 |
| ·最佳dNTPs终浓度的确定 | 第26页 |
| ·最佳随机引物用量的确定 | 第26-27页 |
| ·最佳TaqDNA聚合酶用量的确定 | 第27页 |
| ·引物的筛选 | 第27页 |
| ·电泳结果数字化记录及多态性判断 | 第27页 |
| ·RAPD扩增条带分析 | 第27-28页 |
| ·数据处理及分析 | 第28页 |
| 4 结果与分析 | 第28-40页 |
| ·狗牙根叶片DNA的提取 | 第28-31页 |
| ·提取方法的初步选择 | 第28-29页 |
| ·SDS法的优化 | 第29-31页 |
| ·RAPD扩增体系的建立 | 第31-34页 |
| ·最佳预变性温度及时间的确定 | 第31页 |
| ·最佳变性温度及时间的确定 | 第31页 |
| ·最佳退火温度及时间的确定 | 第31页 |
| ·最佳循环次数的确定 | 第31-32页 |
| ·最佳Mg~(2+)终浓度的确定 | 第32页 |
| ·最佳DNA模板用量的确定 | 第32页 |
| ·最佳dNTPs终浓度的确定 | 第32页 |
| ·最佳随机引物用量的确定 | 第32-33页 |
| ·最佳TaqDNA聚合酶用量的确定 | 第33页 |
| ·RAPD扩增体系的确立 | 第33-34页 |
| ·RAPD随机引物的筛选 | 第34页 |
| ·RAPD扩增条带的多态性 | 第34-37页 |
| ·10个引物扩增带总数及带型数据 | 第34-36页 |
| ·不同类型狗牙根扩增位点的差异 | 第36-37页 |
| ·狗牙根居群的特异性扩增 | 第37页 |
| ·狗牙根居群间的遗传相似系数及聚类分析 | 第37-40页 |
| 5 讨论 | 第40-44页 |
| ·植物DNA的提取 | 第40-41页 |
| ·RAPD技术 | 第41-42页 |
| ·RAPD的影响因素 | 第41页 |
| ·RAPD技术的稳定性 | 第41-42页 |
| ·RAPD分析中强弱带出现的原因 | 第42页 |
| ·狗牙根的RAPD分析 | 第42-44页 |
| ·利用RAPD技术研究狗牙根遗传多样性的可行性 | 第42-43页 |
| ·狗牙根的遗传多样性分析 | 第43-44页 |
| 6 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 图版 | 第53-57页 |
