| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 英文缩略语 | 第10-11页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-19页 |
| 小分子肽制备抗体方法的研究进展 | 第11-16页 |
| 参考文献 | 第16-19页 |
| 第二部分 实验内容 | 第19-63页 |
| 第一章 新疆家蚕抗菌肽的抗体制备及鉴定 | 第19-41页 |
| 1 材料及试剂 | 第19-20页 |
| ·动物 | 第19页 |
| ·菌株与质粒 | 第19页 |
| ·试剂 | 第19-20页 |
| ·主要实验仪器 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-35页 |
| ·重组表达载体的构建 | 第20-21页 |
| ·重组质粒的酶切鉴定 | 第21-23页 |
| ·测序 | 第23页 |
| ·测序结果分析 | 第23页 |
| ·Cecropin-XJ 的原核表达 | 第23-25页 |
| ·重组质粒的大量制备及纯化 | 第25-27页 |
| ·鼠抗Cecropin-XJ 抗血清的制备 | 第27-28页 |
| ·鼠抗Cecropin-XJ 抗血清的特异性鉴定 | 第28-29页 |
| ·抗Cecropin-XJ 抗血清的ELISA 检测 | 第29-30页 |
| ·方阵滴定法确定最适抗原包被浓度 | 第30-31页 |
| ·新疆家蚕抗菌肽的纯化 | 第31-32页 |
| ·免疫胶体金实验 | 第32-35页 |
| 3 结果 | 第35-38页 |
| ·重组表达载体的构建 | 第35-36页 |
| ·Cecropin-XJ 基因的原核表达 | 第36页 |
| ·Western-blotting | 第36-37页 |
| ·鼠抗 Cecropin-XJ 抗血清的 ELISA 检测结果 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-41页 |
| 第二章 增强新疆家蚕抗菌肽核酸免疫效果方法的探讨 | 第41-63页 |
| 1 材料及试剂 | 第41-42页 |
| ·动物 | 第41页 |
| ·菌株与质粒 | 第41页 |
| ·试剂 | 第41-42页 |
| ·主要实验仪器 | 第42页 |
| 2. 方法 | 第42-49页 |
| ·重组表达载体的构建 | 第42-43页 |
| ·重组质粒的酶切鉴定 | 第43页 |
| ·测序 | 第43页 |
| ·测序结果分析 | 第43页 |
| ·真核质粒的大量提取 | 第43-44页 |
| ·重组质粒稀释后的定量和酶切鉴定 | 第44页 |
| ·Cecropin-M8 的原核表达及 SDS-PAGE 鉴定 | 第44页 |
| ·GST-Cecropin-M8 的分离纯化 | 第44-45页 |
| ·GST-Cecropin-M8 的定量 | 第45页 |
| ·重组质粒pcDNA3-Cecropin-XJ 在小鼠肝脏中的瞬时表达 | 第45-48页 |
| ·昆明白小鼠的分组 | 第48-49页 |
| ·免疫策略 | 第49页 |
| ·间接 ELISA 测定血清的效价 | 第49页 |
| 3. 结果 | 第49-58页 |
| ·大提质粒的定量及酶切鉴定: | 第49-51页 |
| ·重组 GST-Cecropin-M8 的表达纯化及定量: | 第51-53页 |
| ·所提取 RNA 电泳鉴定以及水动力转染法的 RT-PCR: | 第53页 |
| ·免疫效果的比较 | 第53-57页 |
| ·抗体稀释度 | 第57-58页 |
| 4. 讨论 | 第58-61页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 第三部分 结论与展望 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 个人简历 | 第66页 |
