摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-12页 |
第1章 引言 | 第12-22页 |
·桑叶研究进展 | 第12-17页 |
·桑叶概况 | 第12页 |
·桑叶的化学成分 | 第12-14页 |
·桑叶的生物活性 | 第14-15页 |
·桑叶的利用 | 第15-17页 |
·多糖研究进展 | 第17-20页 |
·多糖的提取方法 | 第17-18页 |
·多糖的分离纯化 | 第18-19页 |
·多糖的化学结构 | 第19页 |
·多糖的生物活性 | 第19-20页 |
·本课题的选题背景、研究意义及研究内容 | 第20-22页 |
·选题背景与研究意义 | 第20页 |
·研究内容与思路 | 第20-22页 |
第2章 桑叶多糖的提取 | 第22-54页 |
·材料和仪器 | 第22页 |
·实验材料 | 第22页 |
·实验仪器 | 第22页 |
·实验方法 | 第22-25页 |
·原料处理 | 第22-23页 |
·多糖提取工艺流程 | 第23页 |
·总糖含量测定及多糖得率计算方法 | 第23页 |
·普通水提法提取桑叶多糖的研究 | 第23-24页 |
·微波辅助提取法提取桑叶多糖的研究 | 第24-25页 |
·超声波辅助提取法提取桑叶多糖的研究 | 第25页 |
·三种提取方法比较 | 第25页 |
·统计分析 | 第25-26页 |
·实验结果与讨论 | 第26-53页 |
·葡萄糖标准曲线 | 第26页 |
·普通水提法提取桑叶多糖的研究 | 第26-35页 |
·微波辅助提取法提取桑叶多糖的研究 | 第35-41页 |
·超声波辅助提取法提取桑叶多糖的研究 | 第41-49页 |
·三种提取方法比较 | 第49-53页 |
·本章小结 | 第53-54页 |
第3章 桑叶多糖的分离纯化 | 第54-63页 |
·材料与仪器 | 第54-55页 |
·原料 | 第54页 |
·实验材料 | 第54-55页 |
·实验仪器 | 第55页 |
·实验方法 | 第55-58页 |
·桑叶多糖的初步纯化 | 第55-56页 |
·桑叶多糖分级 | 第56-58页 |
·多糖纯度鉴定 | 第58页 |
·实验结果与讨论 | 第58-62页 |
·粗多糖脱色脱蛋白 | 第58-59页 |
·DEAE Sepharose FF离子交换柱层析 | 第59页 |
·Sephadex G-100凝胶柱层析 | 第59-60页 |
·各级分的纯度鉴定 | 第60-62页 |
·本章小结 | 第62-63页 |
第4章 桑叶多糖的化学结构 | 第63-71页 |
·材料与仪器 | 第63-64页 |
·实验材料 | 第63页 |
·实验仪器 | 第63-64页 |
·实验方法 | 第64-65页 |
·紫外光谱分析 | 第64页 |
·红外光谱分析 | 第64页 |
·多糖分子量测定 | 第64页 |
·单糖组成分析 | 第64-65页 |
·实验结果与讨论 | 第65-70页 |
·紫外光谱分析 | 第65-66页 |
·红外光谱分析 | 第66-67页 |
·多糖分子量测定 | 第67-68页 |
·单糖组成分析 | 第68-70页 |
·本章小结 | 第70-71页 |
第5章 桑叶多糖的降血糖活性 | 第71-86页 |
·材料与仪器 | 第71-72页 |
·实验材料 | 第71-72页 |
·受试样品 | 第72页 |
·实验动物 | 第72页 |
·实验仪器 | 第72页 |
·实验方法 | 第72-78页 |
·一般状态观察 | 第72页 |
·多糖对血糖及糖耐量的影响 | 第72-73页 |
·多糖对肝脏抗氧化能力的影响 | 第73-77页 |
·多糖对肝糖原的影响 | 第77-78页 |
·多糖对胰腺的影响 | 第78页 |
·统计分析 | 第78页 |
·实验结果与讨论 | 第78-85页 |
·动物生长状况 | 第78-79页 |
·桑叶多糖对血糖及糖耐量的影响 | 第79-80页 |
·桑叶多糖对肝脏抗氧化能力的影响 | 第80页 |
·桑叶多糖对肝糖原的影响 | 第80-81页 |
·桑叶多糖对糖尿病小鼠修复胰岛损伤的影响 | 第81-85页 |
·本章小结 | 第85-86页 |
第6章 结论、创新点和存在问题 | 第86-88页 |
·结论 | 第86-87页 |
·创新点 | 第87页 |
·存在问题 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-94页 |
附录一 中英文名词术语对照表 | 第94-95页 |
附录二 研究生期间发表的论文 | 第95-96页 |
致谢 | 第96-97页 |