| 中文摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-16页 |
| 中英文缩略词表 | 第16-17页 |
| 引言 | 第17-19页 |
| 第1章 糖尿病大鼠皮肤组织表皮干细胞定位及β-catenin和cyclinD1表达检测 | 第19-35页 |
| 材料和方法 | 第20-24页 |
| 1. 实验材料 | 第20-21页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20-21页 |
| 2. 主要实验方法 | 第21-23页 |
| ·动物分组 | 第21页 |
| ·糖尿病模型建立 | 第21页 |
| ·检测指标 | 第21-22页 |
| ·组织取材、固定及HE染色 | 第22页 |
| ·免疫组织化学染色 | 第22-23页 |
| ·皮肤全层厚度测定 | 第23页 |
| 3. 统计学方法 | 第23-24页 |
| 结果 | 第24-29页 |
| 1. 糖尿病模型观察 | 第24-25页 |
| ·SD大鼠观察 | 第24页 |
| ·创面大体观察 | 第24-25页 |
| 2. 组织学观察 | 第25-29页 |
| ·胰腺组织病理学观察 | 第25-26页 |
| ·皮肤组织病理学观察 | 第26-29页 |
| 讨论 | 第29-31页 |
| 小结 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-35页 |
| 第2章 体外培养观察糖尿病大鼠表皮干细胞β-catenin和cyclinD1的表达特征 | 第35-61页 |
| 材料和方法 | 第35-49页 |
| 1. 实验材料 | 第35-38页 |
| ·实验动物 | 第35页 |
| ·主要仪器 | 第35-36页 |
| ·主要试剂 | 第36-38页 |
| 2. 主要实验方法 | 第38-49页 |
| ·动物分组 | 第38页 |
| ·糖尿病模型建立 | 第38页 |
| ·表皮干细胞的分离培养 | 第38-39页 |
| ·表皮干细胞的观察与鉴定 | 第39-49页 |
| 3. 统计学方法 | 第49页 |
| 结果 | 第49-56页 |
| 1. 形态学观察 | 第49-50页 |
| 2. 细胞克隆形成率的测定 | 第50-51页 |
| 3. ESCs周期检测 | 第51页 |
| 4. ESCs免疫细胞化学染色鉴定 | 第51-54页 |
| 5. β-catenin、cyclinD1和Wnt1mRNA的表达 | 第54-55页 |
| 6. 蛋白印迹法检测β-catenin和cyclinD1的表达 | 第55-56页 |
| 讨论 | 第56-58页 |
| 小结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 第3章 表皮干细胞移植对糖尿病大鼠创面愈合的影响及β-catenin和cyclin1的表达变化 | 第61-79页 |
| 材料和方法 | 第61-68页 |
| 1. 实验材料 | 第61-63页 |
| ·实验动物 | 第61页 |
| ·主要仪器 | 第61-62页 |
| ·主要试剂 | 第62-63页 |
| 2. 主要实验方法 | 第63-65页 |
| ·动物分组 | 第63页 |
| ·糖尿病模型建立 | 第63页 |
| ·表皮干细胞的分离培养 | 第63-64页 |
| ·免疫细胞化学染色鉴定 | 第64-65页 |
| ·羊膜的处理和制备 | 第65页 |
| ·BrdU标记ESCs | 第65页 |
| ·糖尿病创面模型的建立和修复治疗 | 第65页 |
| 3. 检测指标 | 第65-67页 |
| ·大体观察及创面愈合面积测算 | 第66页 |
| ·HE及免疫组织化学染色检测 | 第66页 |
| ·免疫组织化学染色 | 第66-67页 |
| 4. 图像分析 | 第67-68页 |
| 5. 统计学方法 | 第68页 |
| 结果 | 第68-75页 |
| 1. 创面愈合情况 | 第68-69页 |
| 2. HE染色结果 | 第69-70页 |
| 3. 免疫组织化学染色结果 | 第70-75页 |
| 讨论 | 第75-76页 |
| 小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 第4章 总结 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第81-83页 |
| 综述一 糖尿病创面难愈机制的研究进展 | 第83-93页 |
| 参考文献 | 第90-93页 |
| 综述二 表皮干细胞向皮肤附件诱导分化的研究近况 | 第93-100页 |
| 参考文献 | 第98-100页 |
