| 缩略词表 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-21页 |
| ·NMDA受体概述 | 第11-15页 |
| ·NMDA受体在药物依赖形成中的作用 | 第12-14页 |
| ·NMDA受体抑制剂研究进展 | 第14-15页 |
| ·Conantokins研究进展 | 第15-18页 |
| ·Conantokins概述 | 第15-16页 |
| ·Conantokins的作用靶点 | 第16页 |
| ·Conantokins结构与功能的关系 | 第16-18页 |
| ·Conantokins的药理作用 | 第18页 |
| ·本课题的设计思路与方法 | 第18-21页 |
| 第二章 Conantokins抑制小鼠吗啡依赖活性的筛选及评价 | 第21-37页 |
| ·前言 | 第21-22页 |
| ·实验材料 | 第22-23页 |
| ·试验方法 | 第23-24页 |
| ·Conantokins突变体抑制吗啡依赖小鼠催促戒断跳跃活性的测定 | 第23页 |
| ·Conantokins突变体抑制小鼠吗啡身体依赖发展活性的测定 | 第23页 |
| ·Con-G[S16Y]、con-R[1-17]和con-T[M8Q]对小鼠运动功能的影响 | 第23页 |
| ·Con-T[M8Q]对小鼠自发活动的影响 | 第23页 |
| ·Con-T[M8Q]对小鼠吗啡精神依赖的抑制活性的测定 | 第23-24页 |
| ·Con-T[M8Q]对小鼠吗啡精神依赖发展的抑制作用 | 第24页 |
| ·实验结果统计 | 第24页 |
| ·实验结果 | 第24-34页 |
| ·Conantokins各突变体抑制吗啡身体依赖小鼠戒断跳跃的活性 | 第24-28页 |
| ·Conantokins各突变体对小鼠吗啡身体依赖发展的抑制作用 | 第28-30页 |
| ·Con-G[S16Y]、Con-R[1-17]和Con-T[M8Q]对小鼠运动功能的影响 | 第30-31页 |
| ·Con-T[M8Q]对小鼠自发活动的影响 | 第31-32页 |
| ·Con-T[M8Q]对小鼠吗啡精神依赖的抑制作用 | 第32-33页 |
| ·Con-T[M8Q]对小鼠吗啡精神依赖发展的抑制作用 | 第33-34页 |
| ·讨论 | 第34-35页 |
| ·小结 | 第35-37页 |
| 第三章 ConT-[M8Q]抑制小鼠吗啡依赖机理的初步研究 | 第37-51页 |
| ·前言 | 第37页 |
| ·实验材料 | 第37-39页 |
| ·实验仪器、材料 | 第37-38页 |
| ·主要试剂及配制方法 | 第38-39页 |
| ·试验方法 | 第39-43页 |
| ·吗啡依赖小鼠脑海马组织RNA的提取 | 第39页 |
| ·吗啡依赖小鼠脑组织RNA的反转录 | 第39页 |
| ·CaMKⅠγ、CaMKⅡa、β、d及CaMKⅣ基因的扩增 | 第39-41页 |
| ·钙调蛋白激酶单体mRNA表达量的Real-time PCR半定量分析 | 第41页 |
| ·吗啡依赖小鼠脑组织海马区蛋白的提取及定量 | 第41-42页 |
| ·Western-blot实验 | 第42-43页 |
| ·免疫组织荧光实验 | 第43页 |
| ·实验结果 | 第43-49页 |
| ·Con-T[M8Q]作用后吗啡依赖小鼠脑组织海马RNA的提取及定量 | 第43页 |
| ·CaMKⅠγ、CaMKⅡa、β、d及CaMKⅣ基因的扩增 | 第43-44页 |
| ·几种钙调蛋白激酶单体mRNA表达量的半定量分析结果 | 第44-45页 |
| ·吗啡依赖小鼠脑组织海马区蛋白的提取及定量 | 第45页 |
| ·Con-T[M8Q]对吗啡依赖小鼠海马区CaMKⅡa、β表达的影响 | 第45页 |
| ·Con-T[M8Q]对吗啡依赖小鼠海马区CaMKⅣ蛋白表达的影响 | 第45-46页 |
| ·Con-T[M8Q]对NR2B亚基1472位Try磷酸化水平的影响 | 第46-48页 |
| ·Con-T[M8Q]对吗啡依赖小鼠脑组织内pERK及c-Fos表达的影响 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-50页 |
| ·小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附录(一) 硕士期间完成的其它工作-部分抗凝血肽的合成及功能研究 | 第60-88页 |
| 摘要 | 第63-65页 |
| 1 前言 | 第65-66页 |
| 2 实验材料和仪器 | 第66-68页 |
| ·实验仪器 | 第66-67页 |
| ·主要试剂 | 第67页 |
| ·实验动物 | 第67-68页 |
| ·主要试剂及配制方法 | 第68页 |
| 3 试验方法 | 第68-71页 |
| ·多肽固相合成 | 第68页 |
| ·HIR-GKGG-HV3抑制大鼠体内静脉血栓形成实验 | 第68-69页 |
| ·HIR-GKGG-HV3抑制大鼠体内动脉血栓形成实验 | 第69页 |
| ·生色底物法测定HIR-GKGG-HV3抗凝血酶分解时间 | 第69页 |
| ·荧光光谱法测定HIR-GKGG-HV3和人血清白蛋白的结合情况 | 第69页 |
| ·HIR-GKGG-HV3抗胰酶分解能力的测定 | 第69-70页 |
| ·凝血酶滴定实验 | 第70页 |
| ·抗血小板凝集实验 | 第70页 |
| ·出血风险评价实验 | 第70页 |
| ·实验结果统计分析 | 第70-71页 |
| 4 实验结果 | 第71-81页 |
| ·多肽的合成及分析 | 第71-72页 |
| ·HIR-GKGG-HV3体内抑制静脉血栓形成实验 | 第72-73页 |
| ·HIR-GKGG-HV3抑制大鼠体内动脉血栓形成的测定 | 第73页 |
| ·HIR-GKGG-HV3出血风险评价实验 | 第73-74页 |
| ·生色底物法测定HIR-GKGG-HV3抗凝血酶分解时间 | 第74-75页 |
| ·荧光光谱法测定HIR-GKGG-HV3和HSA的结合情况 | 第75-76页 |
| ·HIR-GKGG-HV3抗胰酶分解能力的测定 | 第76-79页 |
| ·新型抗凝肽对凝血酶的抑制活性 | 第79-80页 |
| ·新型抗凝肽抑制ADP-诱导的血小板凝集的活性 | 第80-81页 |
| ·出血风险评价实验 | 第81页 |
| 5 讨论 | 第81-82页 |
| 6 总结 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 附录(二) 硕士期间发表的论文及申请的专利目录 | 第88-90页 |
| 附录(三) 硕士期间发表的科研论文 | 第90-98页 |
| 个人简历 | 第98页 |
