摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略词一览表 | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-39页 |
1.1 前言 | 第12页 |
1.2 原始卵泡形成的基本过程 | 第12-15页 |
1.2.1 调控原始卵泡形成的信号通路 | 第14页 |
1.2.2 调控原始卵泡形成的关键因子 | 第14-15页 |
1.3 原始卵泡激活的研究进展 | 第15-28页 |
1.3.1 调控原始卵泡激活的信号通路 | 第18-22页 |
1.3.2 调控原始卵泡激活的关键因子 | 第22-28页 |
1.4 视黄酸在哺乳动物生殖过程中的作用 | 第28-33页 |
1.4.1 视黄酸简介 | 第28-29页 |
1.4.2 RA在减数分裂启动中的作用 | 第29-30页 |
1.4.3 RA在性别分化中的作用 | 第30-31页 |
1.4.4 RA对卵巢生殖细胞数量的影响 | 第31-32页 |
1.4.5 RA对卵泡分化和雌性生殖力的影响 | 第32页 |
1.4.6 RA在胚胎发育中的作用 | 第32-33页 |
1.5 MAPK3/1信号通路在卵巢中的作用 | 第33-37页 |
1.5.1 MAPK的简介 | 第33-35页 |
1.5.2 MAPK3/1在减数分裂恢复和减数分裂Ⅰ-Ⅱ转化中的作用 | 第35-36页 |
1.5.3 MAPK3/1在卵泡发育和排卵相关事件中的作用 | 第36页 |
1.5.4 MAPK3/1在原核形成中的作用 | 第36-37页 |
1.6 现代辅助生殖技术的研究进展 | 第37-38页 |
1.7 研究的目的及意义 | 第38-39页 |
第二章 实验材料和方法 | 第39-51页 |
2.1 实验动物 | 第39页 |
2.2 实验试剂及试剂盒 | 第39-41页 |
2.3 实验抗体 | 第41-42页 |
2.4 实验仪器及设备 | 第42-43页 |
2.5 实验主要材料 | 第43页 |
2.6 主要实验试剂的配置 | 第43-45页 |
2.6.1 体外培养卵巢所用试剂 | 第43-44页 |
2.6.2 免疫组织化学和免疫荧光所用试剂 | 第44页 |
2.6.3 免疫蛋白印迹相关试剂 | 第44-45页 |
2.7 实验方法 | 第45-51页 |
2.7.1 卵巢分离和培养 | 第45-46页 |
2.7.2 小鼠卵巢形态学分析及卵泡计数 | 第46-47页 |
2.7.3 免疫组织化学 | 第47页 |
2.7.4 免疫荧光 | 第47-48页 |
2.7.5 蛋白免疫印迹 | 第48-49页 |
2.7.6 实时荧光定量PCR | 第49-50页 |
2.7.7 新生小鼠腹腔注射 | 第50页 |
2.7.8 统计分析 | 第50-51页 |
第三章 实验结果 | 第51-82页 |
3.1 RA维持小鼠原始卵泡库的稳定 | 第51-64页 |
3.1.1 RA合成酶、受体及其代谢酶在新生小鼠卵巢中的表达 | 第51-52页 |
3.1.2 RA合成酶、受体及其代谢酶在不同时期的表达变化 | 第52-53页 |
3.1.3 RA合成酶、受体及其代谢酶在卵巢中的表达定位 | 第53-56页 |
3.1.4 RA维持原始卵泡库的稳定 | 第56-60页 |
3.1.5 在体注射RA抑制小鼠原始卵泡的激活 | 第60-64页 |
3.2 MAPK3/1参与调控原始卵泡的激活 | 第64-76页 |
3.2.1 MAPK3/1和p-MAPK3/1在新生小鼠卵巢中的表达定位 | 第64-66页 |
3.2.2 U0126抑制原始卵泡的激活 | 第66-68页 |
3.2.3 U0126抑制颗粒细胞的增殖 | 第68-70页 |
3.2.4 U0126促进卵巢细胞的凋亡 | 第70-72页 |
3.2.5 MAPK3/1参与调控原始卵泡的分子机制 | 第72-76页 |
3.3 MAPK3/1在RA维持原始卵泡库稳定中的研究 | 第76-77页 |
3.4 RA维持原始卵泡库稳定的分子机制 | 第77-82页 |
3.4.1 RA不影响前颗粒细胞中KITL的表达 | 第77-78页 |
3.4.2 RA不影响Fox12的mRNA表达 | 第78-79页 |
3.4.3 RA抑制卵母细胞PI3K-Akt信号通路 | 第79-80页 |
3.4.4 RA抑制Foxo3的出核率 | 第80-82页 |
第四章 讨论 | 第82-86页 |
第五章 结论与展望 | 第86-87页 |
5.1 结论 | 第86页 |
5.2 展望 | 第86-87页 |
参考文献 | 第87-111页 |
致谢 | 第111-113页 |
附录 | 第113-118页 |
个人简历 | 第118-119页 |
博士期间已发表和待发表的文章 | 第119页 |