| 缩略语索引 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-27页 |
| 1.1 NF-κB信号通路与主要功能 | 第16-19页 |
| 1.1.1 NF-κB信号通路的组成与结构 | 第16-17页 |
| 1.1.2 NF-κB信号通路的激活机制 | 第17-18页 |
| 1.1.3 NF-κB信号通路的功能 | 第18-19页 |
| 1.2 病原微生物成分在交叉提呈中发挥重要作用 | 第19页 |
| 1.3 Akt信号通路与主要功能 | 第19-21页 |
| 1.3.1 Akt的结构与激活途径 | 第19-20页 |
| 1.3.2 Akt信号相关途径的主要功能 | 第20-21页 |
| 1.4 Akt相关信号通路和NF-κB信号通路的相互调控 | 第21-22页 |
| 1.5 早期内体是交叉提呈发生的主要场所 | 第22-23页 |
| 1.6 Toll样受体4(TLRs)的信号转导与主要功能 | 第23-25页 |
| 1.6.1 Toll样受体4(TLRs)的信号转导途径 | 第23-24页 |
| 1.6.2 Toll样受体4(TLRs)的信号转导的主要功能 | 第24-25页 |
| 1.7 Sec61在DC交叉提呈中的作用 | 第25-27页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第27-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-34页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.1.2 细胞培养相关器皿 | 第27页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第27-32页 |
| 2.1.3.1 细胞培养相关试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.3.2 Western Blotting相关试剂 | 第28-31页 |
| 2.1.3.3 激光共聚焦相关试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.3.4 流式相关试剂 | 第32页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第32-34页 |
| 2.2 实验方法 | 第34-41页 |
| 2.2.1 树突状细胞(DCs)的诱导与预处理 | 第34-36页 |
| 2.2.1.1 DCs的诱导 | 第34-35页 |
| 2.2.1.2 DCs的预处理 | 第35-36页 |
| 2.2.2 Western Blotting | 第36-39页 |
| 2.2.2.1 蛋白的提取 | 第36-37页 |
| 2.2.2.2 BCA法测蛋白浓度 | 第37页 |
| 2.2.2.3 免疫共沉淀 | 第37-38页 |
| 2.2.2.4 SDS-PAGE凝胶电泳实验 | 第38-39页 |
| 2.2.3 流式细胞分选技术 | 第39-40页 |
| 2.2.4 激光共聚焦 | 第40页 |
| 2.2.5 数据处理 | 第40-41页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第41-57页 |
| 3.1 抗原和致病性内毒素在Akt/NF-κB信号通路活化中的不同作用 | 第41-42页 |
| 3.2 Akt转位于早期内体促进DC的交叉提呈 | 第42-44页 |
| 3.3 IKKα转位于早期内体促进DCs的交叉提呈 | 第44-46页 |
| 3.4 IKKβ转位于早期内体促进DCs的交叉提呈 | 第46-48页 |
| 3.5 微生物抗原促进早期内体形成Akt/IKKα/IKKβ信号体 | 第48-50页 |
| 3.6 Akt经IKKα/β激酶调控NF-κB信号通路 | 第50-51页 |
| 3.7 Akt/IKKα/IKKβ信号体调控Sec61内体转位 | 第51-55页 |
| 3.8 MyD88依赖性的TLR4信号调控DCs的交叉提呈 | 第55-57页 |
| 第四章 结论 | 第57-58页 |
| 第五章 讨论 | 第58-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 在研期间科研成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
