| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 卵母细胞成熟调控概述 | 第12-16页 |
| 1.1.1 卵母细胞的成熟 | 第12-13页 |
| 1.1.2 卵母细胞减数分裂阻滞和恢复 | 第13-16页 |
| 1.1.2.1 卵母细胞减数分裂阻滞 | 第13-15页 |
| 1.1.2.2 卵母细胞减数分裂恢复 | 第15-16页 |
| 1.2 cGMP在卵母细胞减数分裂中的作用 | 第16-18页 |
| 1.2.1 cGMP与鸟苷酸环化酶sGC | 第16-17页 |
| 1.2.2 cGMP相关的信号通路 | 第17-18页 |
| 1.2.2.1 cGMP依赖的磷酸钠二酯酶(PDE)通路 | 第17页 |
| 1.2.2.2 cGMP依赖的蛋白激酶(PKG)通路 | 第17-18页 |
| 1.3 利钠肽家族对减数分裂的影响 | 第18-19页 |
| 1.3.1 利钠肽家族 | 第18-19页 |
| 1.3.2 NPPC/Npr对减数分裂的影响 | 第19页 |
| 1.4 NO/cGMP对卵母细胞成熟的影响 | 第19-21页 |
| 1.4.1 一氧化氮与一氧化氮合酶 | 第19-20页 |
| 1.4.2 NO/cGMP对卵母细胞减数分裂的影响 | 第20-21页 |
| 1.5 斑马鱼卵母细胞发育介绍 | 第21-22页 |
| 1.6 研究目的 | 第22页 |
| 第2章 材料与方法 | 第22-26页 |
| 2.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.2 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.3.1 RNA提取和PCR | 第23-24页 |
| 2.3.2 斑马鱼FG期卵泡的体外孵育实验 | 第24页 |
| 2.3.3 cGMP免疫组化 | 第24-25页 |
| 2.3.4 原代培养 | 第25页 |
| 2.3.5 斑马鱼腹腔注射hCG实验 | 第25页 |
| 2.3.6 卵母细胞和卵泡层细胞的分离 | 第25页 |
| 2.3.7 cGMP测定方法测定 | 第25-26页 |
| 2.3.8 一氧化氮的测定 | 第26页 |
| 2.3.9 统计分析 | 第26页 |
| 第3章 结果与分析 | 第26-35页 |
| 3.1 NO系统和Np系统在斑马鱼卵巢中的表达 | 第26-27页 |
| 3.2 斑马鱼/人的利钠肽成熟肽对卵母细胞成熟的影响 | 第27-28页 |
| 3.3 激活NO/sGC/cGMP对卵母细胞成熟的影响 | 第28-29页 |
| 3.3.1 激活NOS对卵母细胞成熟的影响 | 第28页 |
| 3.3.2 激活sGC对卵母细胞成熟的影响 | 第28-29页 |
| 3.3.3 激活cGMP对卵母细胞成熟的影响 | 第29页 |
| 3.4 抑制NO/sGC/cGMP对卵母细胞成熟的影响 | 第29-30页 |
| 3.4.1 抑制NOS对卵母细胞成熟的影响 | 第29-30页 |
| 3.4.2 抑制sGC对卵母细胞成熟的影响 | 第30页 |
| 3.5 PKG和PDE3抑制剂对卵母细胞成熟的影响 | 第30-31页 |
| 3.6 cGMP通过PKG和PDE3途径调控卵母细胞的成熟 | 第31-32页 |
| 3.7 LH对NO/cGMP的调控 | 第32-35页 |
| 3.7.1 LH对NO的调控 | 第32-33页 |
| 3.7.2 LH对cGMP的调控 | 第33-35页 |
| 第4章 讨论 | 第35-41页 |
| 4.1 Np系统可能并不参与斑马鱼卵母细胞成熟 | 第35页 |
| 4.2 NO/sGC系统参与斑马鱼卵母细胞成熟 | 第35-36页 |
| 4.3 cGMP通过PKG和PDE3途径调控斑马鱼卵母细胞成熟 | 第36页 |
| 4.4 NO/cGMP受LH调控 | 第36-37页 |
| 4.5 结论 | 第37-38页 |
| 4.6 总结与展望 | 第38-41页 |
| 表1 引物序列 | 第41-43页 |
| 表2 利钠肽成熟肽设计 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-58页 |
| 攻读硕士研究生期间取得的科研成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
