| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第一章 前言 | 第11-23页 |
| 1.1 研究背景 | 第11-14页 |
| 1.1.1 生物固氮在农业生产中的重要意义 | 第11-12页 |
| 1.1.1.1 生物固氮概述 | 第11页 |
| 1.1.1.2 共生固氮在生物固氮中的位置 | 第11-12页 |
| 1.1.1.3 根瘤菌共生固氮在农业生产中的应用 | 第12页 |
| 1.1.2 我国的根瘤菌资源与应用状况 | 第12-14页 |
| 1.1.2.1 我国的根瘤菌资源 | 第12-13页 |
| 1.1.2.2 贵州省的豆科植物品种资源 | 第13-14页 |
| 1.2 国内外研究现状与分析 | 第14-21页 |
| 1.2.1 豆科植物及其结瘤情况 | 第14-15页 |
| 1.2.2 根瘤菌的分类与系统发育研究 | 第15-17页 |
| 1.2.3 根瘤菌共生固氮的生态功能及其在生态修复中的作用 | 第17-18页 |
| 1.2.4 豆科植物-根瘤菌共生多样性与地理环境的关系 | 第18页 |
| 1.2.5 影响豆科植物根瘤菌结瘤固氮的环境因素 | 第18-21页 |
| 1.3 研究目的及意义 | 第21-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.1 试剂与试剂盒 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器与实验用品 | 第23页 |
| 2.2 贵州天然豆科牧草根瘤菌的资源调查 | 第23-24页 |
| 2.2.1 资源调查路线 | 第23-24页 |
| 2.2.1.1 调查路线的设计 | 第23-24页 |
| 2.2.1.2 设计的调查路线 | 第24页 |
| 2.2.2 根瘤标本的采集 | 第24页 |
| 2.3 根瘤菌株的分离纯化 | 第24-25页 |
| 2.3.1 根瘤菌分离纯化培养基 | 第24-25页 |
| 2.3.2 根瘤菌株的分离纯化 | 第25页 |
| 2.4 革兰氏染色鉴定 | 第25-26页 |
| 2.5 菌株培养与菌种保存 | 第26页 |
| 2.6 菌株 16S rDNA分子鉴定 | 第26-29页 |
| 2.6.1 根瘤菌DNA的提取方法 | 第26-27页 |
| 2.6.2 DNA的检测 | 第27页 |
| 2.6.3 菌株 16S rDNA的PCR扩增 | 第27-28页 |
| 2.6.3.1 引物设计 | 第27页 |
| 2.6.3.2 PCR反应体系 | 第27-28页 |
| 2.6.3.3 PCR扩增程序 | 第28页 |
| 2.6.3.4 扩增产物检测 | 第28页 |
| 2.6.3.5 PCR扩增产物的纯化回收 | 第28页 |
| 2.6.4 菌株 16Sr DNA的序列测定与分析 | 第28-29页 |
| 2.7 区系分析 | 第29-30页 |
| 第三章 结果与分析 | 第30-76页 |
| 3.1 根瘤菌资源调查结果 | 第30-50页 |
| 3.1.1 调查范围 | 第30-31页 |
| 3.1.2 调查结果 | 第31页 |
| 3.1.3 根瘤特征 | 第31-50页 |
| 3.2 根瘤菌的分离纯化结果 | 第50-51页 |
| 3.2.1 根瘤菌的分离纯化 | 第50-51页 |
| 3.2.2 革兰氏染色鉴定 | 第51页 |
| 3.3 根瘤菌分子鉴定及区系分析结果 | 第51-76页 |
| 3.3.1 根瘤菌基因组DNA的提取 | 第51-52页 |
| 3.3.2 PCR扩增产物的检测与纯化回收 | 第52页 |
| 3.3.3 16S r DNA序列测定及系统发育地位的确定 | 第52-64页 |
| 3.3.4 根瘤菌区系分析结果 | 第64-76页 |
| 3.3.4.1 贵州天然豆科牧草根瘤菌区系分布特征 | 第64-67页 |
| 3.3.4.2 贵州野生优势豆科牧草根瘤菌区系分布特征 | 第67-76页 |
| 第四章 讨论 | 第76-81页 |
| 4.1 共生结瘤与植物种类的关系 | 第76页 |
| 4.2 共生结瘤与生态条件的关系 | 第76-77页 |
| 4.3 根瘤特征与植物种类及生态条件的关系 | 第77-78页 |
| 4.4 贵州省天然豆科牧草根瘤菌区系分布的特异性 | 第78-80页 |
| 4.5 贵州省天然豆科牧草丰富的根瘤菌资源 | 第80-81页 |
| 第五章 小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 附录Ⅰ | 第88-90页 |
| 附录Ⅱ | 第90-91页 |
