| 中文摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 英文缩略词 | 第10-17页 |
| 绪论 | 第17-18页 |
| 第1章 综述 | 第18-33页 |
| 1.1 真菌概述 | 第18-19页 |
| 1.1.1 真菌简介 | 第18页 |
| 1.1.2 药用真菌有效成分 | 第18页 |
| 1.1.3 真菌药理作用 | 第18-19页 |
| 1.2 鹅膏菌概述 | 第19-20页 |
| 1.3 橙盖鹅膏菌 | 第20-21页 |
| 1.3.1 橙盖鹅膏菌简介 | 第20页 |
| 1.3.2 橙盖鹅膏菌药理作用 | 第20-21页 |
| 1.4 多糖概述 | 第21-25页 |
| 1.4.1 多糖的制备 | 第21-22页 |
| 1.4.2 多糖的主要功效 | 第22-24页 |
| 1.4.3 多糖检测方法 | 第24页 |
| 1.4.4 真菌多糖研究现状 | 第24-25页 |
| 1.5 阿尔兹海默症研究现状 | 第25-30页 |
| 1.5.1 阿尔兹海默症 | 第25页 |
| 1.5.2 阿尔兹海默症概述 | 第25-26页 |
| 1.5.3 阿尔兹海默症症状 | 第26-27页 |
| 1.5.4 阿尔兹海默症发病机制 | 第27-30页 |
| 1.5.5 阿尔兹海默症治疗 | 第30页 |
| 1.6 立题背景及意义 | 第30-33页 |
| 第2章 橙盖鹅膏菌的成分鉴定 | 第33-40页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第34页 |
| 2.2.1 仪器设备 | 第34页 |
| 2.2.2 试剂及配制 | 第34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-35页 |
| 2.3.1 DNS法测还原糖 | 第34页 |
| 2.3.2 氨基酸测定 | 第34页 |
| 2.3.3 核苷酸测定 | 第34-35页 |
| 2.3.4 离子检测 | 第35页 |
| 2.3.5 脂肪酸检测 | 第35页 |
| 2.4 实验结果 | 第35-38页 |
| 2.4.1 A.ceasarea主要成分 | 第35-36页 |
| 2.4.2 A.ceasarea氨基酸的组成和含量 | 第36-38页 |
| 2.4.3 脂肪酸的组成比例 | 第38页 |
| 2.4.4 橙盖鹅膏菌矿物质的组成和含量 | 第38页 |
| 2.5 讨论 | 第38-39页 |
| 2.6 本章小结 | 第39-40页 |
| 第3章 橙盖鹅膏菌水提物对阿尔兹海默症模型小鼠保护作用的初步探究 | 第40-61页 |
| 3.1 引言 | 第40-41页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第41-43页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第41页 |
| 3.2.2 实验细胞系 | 第41-42页 |
| 3.2.3 实验试剂及抗体 | 第42-43页 |
| 3.2.4 实验动物 | 第43页 |
| 3.2.5 实验测定试剂盒 | 第43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-46页 |
| 3.3.1 橙盖鹅膏菌水提物(AC)的制备 | 第43页 |
| 3.3.2 阿尔兹海默症动物模型建立及给药方式 | 第43-44页 |
| 3.3.3 小鼠分组 | 第44页 |
| 3.3.4 水迷宫实验 | 第44页 |
| 3.3.5 疲劳转棒实验 | 第44页 |
| 3.3.6 自主活动实验 | 第44-45页 |
| 3.3.7 Westernblot研究 | 第45页 |
| 3.3.8 MTT实验 | 第45页 |
| 3.3.9 细胞凋亡实验 | 第45页 |
| 3.3.10 ROS检测实验 | 第45-46页 |
| 3.3.11 MMP检测实验 | 第46页 |
| 3.3.12 Ca~(2+)检测实验 | 第46页 |
| 3.3.13 统计学处理 | 第46页 |
| 3.4 实验结果 | 第46-58页 |
| 3.4.1 AC对L-Glu诱导的细胞毒性的影响 | 第46页 |
| 3.4.2 AC对L-Glu诱导的细胞凋亡的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.3 AC对L-Glu诱导线粒体损伤的影响 | 第47-49页 |
| 3.4.4 AC对L-Glu诱导的影响Ca~(2+))增多影响 | 第49-50页 |
| 3.4.5 AC对AKT/mTOR信号通路的影响 | 第50页 |
| 3.4.6 AC改善D-gal和AlCl3诱导的AD样行为 | 第50-53页 |
| 3.4.7 AC对AD小鼠胆碱能神经系统的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.8 AC对AD小鼠大脑中SOD、ROS的影响 | 第54-57页 |
| 3.4.9 AC对小鼠血清和组织中Aβ1-42的影响 | 第57-58页 |
| 3.5 讨论 | 第58-60页 |
| 3.6 本章小结 | 第60-61页 |
| 第4章 橙盖鹅膏多糖对阿尔兹海默症的保护作用及机制 | 第61-87页 |
| 4.1 引言 | 第61-62页 |
| 4.2 仪器与材料 | 第62-65页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第62-63页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第63-65页 |
| 4.2.3 细胞系及实验动物 | 第65页 |
| 4.3 实验方法 | 第65-70页 |
| 4.3.1 ACPS的提取 | 第65-66页 |
| 4.3.2 动物模型建立及给药方式 | 第66-67页 |
| 4.3.3 水迷宫实验 | 第67页 |
| 4.3.4 旷场实验 | 第67页 |
| 4.3.5 实验测定试剂盒 | 第67页 |
| 4.3.6 MTT实验 | 第67-68页 |
| 4.3.7 细胞凋亡实验 | 第68页 |
| 4.3.8 ROS检测实验 | 第68页 |
| 4.3.9 Ca~(2+)检测实验 | 第68页 |
| 4.3.10 线粒体膜电位检测(JC-1) | 第68页 |
| 4.3.11 Western blot实验 | 第68-69页 |
| 4.3.12 免疫组化染色 | 第69页 |
| 4.3.13 HE染色 | 第69-70页 |
| 4.4 实验结果 | 第70-84页 |
| 4.4.1 ACPS的结构分析及对L-Glu诱导细胞损伤的作用 | 第70-71页 |
| 4.4.2 ACPS通过Nrf2信号通路抑制L-Glu诱导的细胞凋亡和线粒体损伤 | 第71-72页 |
| 4.4.3 ACPS对L-Glu诱导的MMP降低的影响 | 第72-73页 |
| 4.4.4 ACPS对细胞内Ca~(2+)浓度的影响 | 第73页 |
| 4.4.5 ACPS抑制细胞凋亡的相关机制 | 第73-75页 |
| 4.4.6 ACPS对AD模型小鼠行为和Aβ沉积的影响 | 第75-76页 |
| 4.4.7 ACPS对小鼠器官毒性实验 | 第76-78页 |
| 4.4.8 ACPS对AD小鼠胆碱能神经系统及氧化应激因子的影响 | 第78-84页 |
| 4.5 讨论 | 第84-86页 |
| 4.6 本章小结 | 第86-87页 |
| 第5章 橙盖鹅膏菌纯化多糖在APP/PS1基因突变小鼠中的活性研究 | 第87-120页 |
| 5.1 引言 | 第87-88页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第88-89页 |
| 5.2.1 实验仪器设备 | 第88-89页 |
| 5.2.2 实验试剂及抗体 | 第89页 |
| 5.2.3 试剂盒 | 第89页 |
| 5.2.4 实验动物 | 第89页 |
| 5.3 实验方法 | 第89-96页 |
| 5.3.1 实验动物分组及给药 | 第89-90页 |
| 5.3.2 多糖分离纯化 | 第90-91页 |
| 5.3.3 多糖分子量检测 | 第91-92页 |
| 5.3.4 多糖单糖组成分析 | 第92页 |
| 5.3.5 纯化多糖红外光谱检测 | 第92页 |
| 5.3.6 样品收集 | 第92页 |
| 5.3.7 水迷宫实验 | 第92-93页 |
| 5.3.8 旷场实验 | 第93页 |
| 5.3.9 免疫组化染色 | 第93页 |
| 5.3.10 HE染色 | 第93页 |
| 5.3.11 蛋白组学分析 | 第93-94页 |
| 5.3.12 BCA检测 | 第94页 |
| 5.3.13 丙酮沉淀 | 第94页 |
| 5.3.14 蛋白重溶、还原、烷基化以及酶解 | 第94页 |
| 5.3.15 去除SDC | 第94-95页 |
| 5.3.16 多肽脱盐 | 第95页 |
| 5.3.17 nano-UPLC分离 | 第95页 |
| 5.3.18 LC-MS/MS | 第95-96页 |
| 5.3.19 MaxQuant分析和LFQ定量 | 第96页 |
| 5.3.20 统计检验和生物信息学分析 | 第96页 |
| 5.3.21 统计学处理 | 第96页 |
| 5.4 实验结果 | 第96-116页 |
| 5.4.1 橙盖鹅膏菌多糖的提取纯化 | 第96-100页 |
| 5.4.2 ACPS-2对APP/PS1小鼠行为学的影响 | 第100-101页 |
| 5.4.3 ACPS-2对APP/PS1小鼠Aβ和p-Tau表达的影响 | 第101页 |
| 5.4.4 ACPS-2对APP/PS1小鼠神经递质及氧化应激因子的影响 | 第101-108页 |
| 5.4.5 ACPS-2对AD小鼠脏器病理学影响 | 第108页 |
| 5.4.6 蛋白组学分析 | 第108-110页 |
| 5.4.7 蛋白定量丰度分布 | 第110页 |
| 5.4.8 定量重复性实验 | 第110页 |
| 5.4.9 差异表达倍数分析 | 第110-111页 |
| 5.4.10 聚类分析 | 第111-112页 |
| 5.4.11 差异表达蛋白的GO分析 | 第112页 |
| 5.4.12 KEGG通路分析 | 第112-115页 |
| 5.4.13 蛋白互作网络分析 | 第115-116页 |
| 5.5 讨论 | 第116-119页 |
| 5.6 本章小结 | 第119-120页 |
| 第6章 结论与展望 | 第120-122页 |
| 6.1 结论 | 第120页 |
| 6.2 研究展望 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-134页 |
| 作者在学期间所取得的科研成果 | 第134-135页 |
| 致谢 | 第135-137页 |
| 附录1 | 第137-151页 |
| 附表1. APP/PS1差异蛋白检测结果 | 第137-151页 |
