| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 绪论 | 第18-36页 |
| 1、二氧化钛(TiO_2)纳米管的研究进展 | 第18-27页 |
| 1.1 TiO_2纳米管制备的研究进展 | 第19-24页 |
| 1.2 TiO_2纳米管对成骨的影响 | 第24-25页 |
| 1.3 TiO_2纳米管的载药性能研究 | 第25-27页 |
| 2、种植体“骨感知”的研究进展 | 第27-29页 |
| 3、周围神经再生的机制 | 第29-31页 |
| 4、不同钛表面对施万细胞的影响 | 第31-32页 |
| 5、 | 第32-36页 |
| 5.1 营养神经的药物 | 第32-33页 |
| 5.2 神经营养因子 | 第33页 |
| 5.3 免疫抑制剂 | 第33-34页 |
| 5.4 米诺环素 | 第34-36页 |
| 第一章 TiO_2纳米管的制备及表征 | 第36-48页 |
| 1.1 材料 | 第36-37页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第36页 |
| 1.1.2 主要设备 | 第36页 |
| 1.1.3 主要软件 | 第36-37页 |
| 1.2 二氧化钛纳米管的制备 | 第37-38页 |
| 1.2.1 钛片预处理 | 第37页 |
| 1.2.2 阳极氧化法制备过程 | 第37-38页 |
| 1.3 TiO_2纳米管的表征 | 第38-39页 |
| 1.3.1 体视显微镜(Stereoscopic Microscope,SM)分析 | 第38页 |
| 1.3.2 扫描电子显微镜(Scanning Electron Microscope,SEM)分析 | 第38页 |
| 1.3.3 X射线衍射(X-ray diffraction,XRD)分析 | 第38页 |
| 1.3.4 接触角及表面能分析 | 第38页 |
| 1.3.5 统计分析 | 第38-39页 |
| 1.4 实验结果 | 第39-43页 |
| 1.4.1 体式显微镜结果 | 第39页 |
| 1.4.2 扫描电子显微镜观察结果 | 第39-41页 |
| 1.4.3 X射线衍射物象分析 | 第41-42页 |
| 1.4.4 接触角观察结果 | 第42-43页 |
| 1.5 讨论 | 第43-45页 |
| 1.6 小结 | 第45-48页 |
| 第二章 TiO_2纳米管负载米诺环素的载药及缓释分析 | 第48-55页 |
| 2.1 材料 | 第48页 |
| 2.1.1 仪器和耗材 | 第48页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第48页 |
| 2.1.3 主要软件 | 第48页 |
| 2.2 方法 | 第48-49页 |
| 2.2.1 负载米诺环素溶液 | 第48-49页 |
| 2.2.2 药物的体外释放 | 第49页 |
| 2.3 结果 | 第49-52页 |
| 2.3.1 载药率 | 第49-50页 |
| 2.3.2 元素分析 | 第50-52页 |
| 2.3.3 米诺环素的体外释放 | 第52页 |
| 2.4 讨论 | 第52-54页 |
| 2.5 小结 | 第54-55页 |
| 第三章 TiO_2纳米管载米诺环素对成骨细胞活性的影响 | 第55-76页 |
| 3.1 材料 | 第55-57页 |
| 3.1.1 主要仪器和设备 | 第55-56页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第56-57页 |
| 3.1.3 实验细胞 | 第57页 |
| 3.1.4 主要软件 | 第57页 |
| 3.2 方法 | 第57-64页 |
| 3.2.1 样品制备及分组 | 第57-58页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第58-59页 |
| 3.2.3 细胞粘附检测 | 第59页 |
| 3.2.4 细胞增殖检测 | 第59-60页 |
| 3.2.5 细胞内碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)活性检测 | 第60页 |
| 3.2.6 细胞胶原分泌检测 | 第60-61页 |
| 3.2.7 细胞外基质矿化检测 | 第61页 |
| 3.2.8 成骨相关基因表达水平 | 第61-64页 |
| 3.3 结果 | 第64-71页 |
| 3.3.1 细胞黏附 | 第64-66页 |
| 3.3.2 细胞增殖 | 第66-67页 |
| 3.3.3 碱性磷酸酶活性鉴定 | 第67-68页 |
| 3.3.4 细胞胶原分泌检测 | 第68页 |
| 3.3.5 细胞外基质分析 | 第68-69页 |
| 3.3.6 成骨相关基因检测 | 第69-71页 |
| 3.4 讨论 | 第71-74页 |
| 3.5 小结 | 第74-76页 |
| 第四章 TiO_2纳米管载米诺环素对施万细胞生物行为的影响 | 第76-98页 |
| 4.1 材料 | 第76-78页 |
| 4.1.1 仪器和耗材 | 第76页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第76-78页 |
| 4.1.3 主要软件 | 第78页 |
| 4.1.4 实验细胞 | 第78页 |
| 4.2 方法 | 第78-84页 |
| 4.2.1 施万细胞的培养 | 第78页 |
| 4.2.2 施万细胞在形态观察 | 第78-79页 |
| 4.2.3 CCK-8检测细胞增殖情况 | 第79-80页 |
| 4.2.4 流式细胞仪检测细胞活性 | 第80页 |
| 4.2.5 RT-qPCR检测NGF及GDNF mRNA表达情况 | 第80-82页 |
| 4.2.6 Western blot检测蛋白表达情况 | 第82-84页 |
| 4.3 结果 | 第84-93页 |
| 4.3.1 施万细胞形态观察 | 第84-87页 |
| 4.3.2 CCK-8检测细胞增殖情况 | 第87-89页 |
| 4.3.3 流式细胞检测细胞活性 | 第89-91页 |
| 4.3.4 NGF及GDNFmRNA表达情况 | 第91-92页 |
| 4.3.5 NGF及GDNF蛋白表达情况 | 第92-93页 |
| 4.4 讨论 | 第93-96页 |
| 4.5 小结 | 第96-98页 |
| 第五章 TiO_2纳米管载米诺环素对施万细胞迁移影响 | 第98-116页 |
| 5.1 材料 | 第98-100页 |
| 5.1.1 仪器设备 | 第98页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第98-99页 |
| 5.1.3 主要软件 | 第99-100页 |
| 5.1.4 实验细胞 | 第100页 |
| 5.2 方法 | 第100-105页 |
| 5.2.1 细胞培养 | 第100页 |
| 5.2.2 细胞划痕实验 | 第100页 |
| 5.2.3 Western blot检测整合素β1及其下游信号分子的表达 | 第100-102页 |
| 5.2.4 细胞转染 | 第102-103页 |
| 5.2.5 RT-PCR验证整合素β1沉默情况 | 第103-104页 |
| 5.2.6 Western blot验证整合素β1沉默情况 | 第104页 |
| 5.2.7 Transwell检测细胞迁移 | 第104-105页 |
| 5.3 结果 | 第105-111页 |
| 5.3.1 TiO_2纳米管载米诺环素对施万细胞迁移的影响 | 第105-106页 |
| 5.3.2 Western-blot检测施万细胞integrinβ1及其下游分子的表达 | 第106-107页 |
| 5.3.3 整合素β1基因沉默情况 | 第107-109页 |
| 5.3.4 Transwell检测Integrinβ1沉默后药物对施旺细胞的迁移能力的作用 | 第109-111页 |
| 5.4 讨论 | 第111-114页 |
| 5.5 小结 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-134页 |
| 全文结论 | 第134-136页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
