摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
1 绪论 | 第17-30页 |
1.1 研究背景及目的和意义 | 第17-19页 |
1.1.1 研究背景 | 第17-18页 |
1.1.2 研究的目的和意义 | 第18-19页 |
1.2 磁性纳米粒子的生物合成 | 第19-28页 |
1.2.1 产磁性纳米粒子的微生物种类 | 第19-20页 |
1.2.2 生物合成磁性纳米粒子的形态特征 | 第20-22页 |
1.2.3 微生物合成磁性纳米粒子的影响因素 | 第22-24页 |
1.2.4 微生物合成磁性纳米粒子的形成过程 | 第24-26页 |
1.2.5 微生物合成磁性纳米粒子的磁学性质 | 第26-27页 |
1.2.6 微生物合成磁性纳米粒子的应用和生物学意义 | 第27-28页 |
1.3 本文的主要研究内容 | 第28-30页 |
2 磁性纳米粒子细菌的筛选及生长的影响因素 | 第30-46页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
2.1.1 材料 | 第30页 |
2.1.2 生化试剂 | 第30页 |
2.1.3 实验仪器 | 第30-31页 |
2.2 试剂配制 | 第31页 |
2.3 实验方法 | 第31-35页 |
2.3.1 产磁性纳米粒子菌株的筛选 | 第31-32页 |
2.3.2 菌株的鉴定 | 第32-33页 |
2.3.3 pH对菌体生长的影响 | 第33页 |
2.3.4 氧气对菌体生长的影响 | 第33-34页 |
2.3.5 碳源对菌体生长的影响 | 第34页 |
2.3.6 氮源对菌体生长的影响 | 第34页 |
2.3.7 铁源对菌体生长的影响 | 第34页 |
2.3.8 温度对菌体生长的影响 | 第34页 |
2.3.9 培养时间对菌体生长的影响 | 第34-35页 |
2.4 结果与讨论 | 第35-44页 |
2.4.1 产磁性纳米粒子菌株的筛选 | 第35页 |
2.4.2 形态及生理生化特性 | 第35-36页 |
2.4.3 分子生物学鉴定 | 第36-37页 |
2.4.4 pH对菌体生长的影响 | 第37-38页 |
2.4.5 氧气对菌体生长的影响 | 第38-39页 |
2.4.6 碳源对菌体生长的影响 | 第39-40页 |
2.4.7 氮源对菌体生长的影响 | 第40-41页 |
2.4.8 铁源对菌体生长的影响 | 第41-42页 |
2.4.9 温度对菌体生长的影响 | 第42-43页 |
2.4.10 培养时间对菌体生长的影响 | 第43-44页 |
2.5 本章小结 | 第44-46页 |
3 菌体细胞内磁性纳米粒子的提取和表征 | 第46-52页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第46页 |
3.1.1 材料 | 第46页 |
3.1.2 实验仪器 | 第46页 |
3.2 实验方法 | 第46-47页 |
3.2.1 菌体细胞内磁性纳米粒子的提取 | 第46-47页 |
3.2.2 透射电子显微镜(TEM)样品制备 | 第47页 |
3.2.3 X-射线粉末衍射(XRD) | 第47页 |
3.2.4 X-射线电子能谱(XPS) | 第47页 |
3.2.5 磁滞回线的测量 | 第47页 |
3.3 结果与讨论 | 第47-51页 |
3.3.1 菌体胞内磁性纳米粒子的提取 | 第47页 |
3.3.2 透射电子显微镜观察 | 第47-49页 |
3.3.3 X-射线粉末衍射 | 第49页 |
3.3.4 X-射线电子能谱 | 第49-50页 |
3.3.5 磁滞回线的测量 | 第50-51页 |
3.4 本章小结 | 第51-52页 |
4 YN01产磁性纳米粒子的类过氧化物酶活性及应用 | 第52-69页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第52-53页 |
4.1.1 实验材料 | 第52页 |
4.1.2 生化试剂 | 第52-53页 |
4.1.3 实验仪器 | 第53页 |
4.2 试剂配制 | 第53-54页 |
4.3 实验方法 | 第54-57页 |
4.3.1 BMNPs类过氧化物酶活性的测定 | 第54页 |
4.3.2 BMNPs催化反应前后XRD测定 | 第54页 |
4.3.3 BMNPs浓度对类过氧化物酶活性的影响 | 第54页 |
4.3.4 pH对类过氧化物酶活性的影响 | 第54页 |
4.3.5 温度对类过氧化物酶活性的影响 | 第54页 |
4.3.6 H_2O_2浓度对类过氧化物酶活性的影响 | 第54页 |
4.3.7 BMNPs及其浸出液的类过氧化物酶催化曲线 | 第54-55页 |
4.3.8 BMNPs模拟过氧化物酶的动力学分析 | 第55页 |
4.3.9 BMNPs修饰电极的电化学分析 | 第55页 |
4.3.10 电子顺磁共振光谱(ESR)分析 | 第55-56页 |
4.3.11 BMNPs类过氧化物酶和天然酶的稳定性比较 | 第56页 |
4.3.12 BMNPs模拟过氧化物酶在H_2O_2和葡萄糖检测中的应用 | 第56页 |
4.3.13 BMNPs模拟过氧化物酶在有机物降解中的应用 | 第56-57页 |
4.4 结果与讨论 | 第57-68页 |
4.4.1 BMNPs类过氧化物酶活性的测定 | 第57页 |
4.4.2 BMNPs催化反应前后成分分析 | 第57-58页 |
4.4.3 不同条件对BMNPs类过氧化物酶活性的影响 | 第58-60页 |
4.4.4 BMNPs及其浸出液的类过氧化物酶催化曲线 | 第60页 |
4.4.5 BMNPs模拟过氧化物酶的动力学分析 | 第60-62页 |
4.4.6 BMNPs的催化反应机理研究 | 第62-64页 |
4.4.7 BMNPs类过氧化物酶和天然酶的稳定性比较 | 第64-65页 |
4.4.8 BMNPs模拟过氧化物酶在H_2O_2和葡萄糖检测中的应用 | 第65-66页 |
4.4.9 BMNPs模拟过氧化物酶在有机物降解中的应用 | 第66-68页 |
4.5 本章小结 | 第68-69页 |
5 YN01产磁性纳米粒子的类过氧化氢酶活性及应用 | 第69-80页 |
5.1 实验材料与仪器 | 第69-70页 |
5.1.1 材料 | 第69页 |
5.1.2 生化试剂 | 第69-70页 |
5.1.3 实验仪器 | 第70页 |
5.2 试剂配制 | 第70-71页 |
5.3 实验方法 | 第71-72页 |
5.3.1 不同条件下BMNPs类过氧化氢酶的催化活性 | 第71页 |
5.3.2 BMNPs类过氧化氢酶的催化动力学研究 | 第71-72页 |
5.3.3 BMNPs模拟过氧化氢酶和天然酶的稳定性比较 | 第72页 |
5.3.4 BMNPs用于电化学传感器测定H_2O_2 | 第72页 |
5.4 结果与讨论 | 第72-79页 |
5.4.1 BMNPs的类过氧化氢酶活性 | 第72-73页 |
5.4.2 不同条件对BMNPs类过氧化氢酶活性的影响 | 第73-75页 |
5.4.3 BMNPs类过氧化氢酶催化动力学研究 | 第75-76页 |
5.4.4 BMNPs类过氧化氢酶和天然酶的稳定性比较 | 第76-78页 |
5.4.5 BMNPs用于电化学传感器测定H_2O_2 | 第78-79页 |
5.5 本章小结 | 第79-80页 |
6 YN01产磁性纳米粒子清除胞内活性氧的研究 | 第80-93页 |
6.1 实验材料与仪器 | 第81页 |
6.1.1 材料 | 第81页 |
6.1.2 生化试剂 | 第81页 |
6.1.3 实验仪器 | 第81页 |
6.2 试剂配制 | 第81-82页 |
6.3 实验方法 | 第82-84页 |
6.3.1 铁对YN01胞内ROS含量的影响 | 第82页 |
6.3.2 YN01菌体胞内ROS的测定 | 第82-83页 |
6.3.3 YN01细胞内含物及BMNPs类超氧化物歧化酶酶(SOD)活性的测定 | 第83页 |
6.3.4 SOD专性抑制剂对YN01生长、ROS产生及BMNPs产量的影响 | 第83-84页 |
6.3.5 POD抑制剂对YN01生长、H_2O_2产生及BMNPs产量的影响 | 第84页 |
6.4 结果与讨论 | 第84-92页 |
6.4.1 铁对YN01胞内ROS含量的影响 | 第84-85页 |
6.4.2 BMNPs的类超氧化物歧化酶活性 | 第85-86页 |
6.4.3 YN01胞内的SOD,CAT和POD的活性 | 第86页 |
6.4.4 SOD专性抑制剂对YN01生长、ROS产生及BMNPs产量的影响 | 第86-89页 |
6.4.5 POD抑制剂对YN01生长、H_2O_2产生及BMNPs产量的影响 | 第89-92页 |
6.5 本章小结 | 第92-93页 |
结论 | 第93-96页 |
参考文献 | 第96-106页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第106-107页 |
致谢 | 第107-109页 |
附表 | 第109页 |