| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 1 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 研究背景 | 第10-18页 |
| 1.1.1 外泌体 | 第10-11页 |
| 1.1.2 外泌体的提取与鉴定 | 第11-12页 |
| 1.1.3 外泌体的功能 | 第12-13页 |
| 1.1.4 血清外泌体 | 第13-14页 |
| 1.1.5 烫伤修复及机制 | 第14页 |
| 1.1.6 烫伤治疗的主要手段 | 第14-15页 |
| 1.1.7 组织修复与AKT通路 | 第15页 |
| 1.1.8 组织修复与VEGF | 第15-17页 |
| 1.1.9 问题的提出 | 第17-18页 |
| 1.2 研究目的 | 第18页 |
| 1.3 研究内容 | 第18-19页 |
| 1.4 研究思路 | 第19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-35页 |
| 2.1 材料 | 第19-25页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 主要实验仪器和设备 | 第19-21页 |
| 2.1.3 主要实验试剂和药品 | 第21-24页 |
| 2.1.4 主要试剂配置 | 第24-25页 |
| 2.2 方法 | 第25-35页 |
| 2.2.1 血清外泌体的提取(试剂盒法) | 第25页 |
| 2.2.2 外泌体的形态学检测 | 第25-26页 |
| 2.2.3 外泌体粒径检测 | 第26页 |
| 2.2.4 深二度烫伤小鼠模型的建立 | 第26页 |
| 2.2.5 外泌体的给药方法 | 第26页 |
| 2.2.6 动物组织取材 | 第26页 |
| 2.2.7 蛋白免疫印迹 | 第26-29页 |
| 2.2.8 苏木素-伊红(HE)染色 | 第29-30页 |
| 2.2.9 血清外泌体的荧光标记及其在小鼠皮肤组织的分布观察 | 第30-31页 |
| 2.2.10 细胞培养 | 第31-32页 |
| 2.2.11 MTT法检测细胞增殖 | 第32页 |
| 2.2.12 细胞划痕法检测细胞迁移 | 第32页 |
| 2.2.13 流式细胞术 | 第32-33页 |
| 2.2.14 细胞免疫荧光 | 第33-34页 |
| 2.2.15 实时荧光定量PCR(RT-qPCR) | 第34-35页 |
| 2.2.16 统计 | 第35页 |
| 3 实验结果 | 第35-49页 |
| 3.1 试剂盒法提取大鼠血清外泌体的相关鉴定 | 第35-37页 |
| 3.1.1 血清外泌体的形态学检测 | 第35-36页 |
| 3.1.2 血清外泌体粒径检测结果 | 第36-37页 |
| 3.1.3 外泌体标志蛋白的鉴定结果 | 第37页 |
| 3.2 血清外泌体促进小鼠烫伤皮肤创面的愈合 | 第37-41页 |
| 3.2.1 小鼠皮肤深二度烫伤模型的建立 | 第37-38页 |
| 3.2.2 血清外泌体促进小鼠皮肤烫伤伤口愈合 | 第38-39页 |
| 3.2.3 血清外泌体对小鼠皮肤烫伤伤口组织学的影响。 | 第39-40页 |
| 3.2.4 血清外泌体进入烫伤组织细胞内 | 第40-41页 |
| 3.3 血清外泌体对细胞凋亡、迁移及增值的影响 | 第41-45页 |
| 3.3.1 血清外泌体抑制热损伤诱导的Hacat细胞凋亡 | 第41-42页 |
| 3.3.2 清外泌体促进Hacat细胞迁移 | 第42-44页 |
| 3.3.3 血清外泌体促进成纤维细胞的增殖 | 第44-45页 |
| 3.4 血清外泌体促烫伤创面愈合的机制 | 第45-49页 |
| 3.4.1 血清外泌体对烫伤组织AKT磷酸化的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.2 血清外泌体对EA.hy926细胞VEGF蛋白表达的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.3 血清外泌体对EA.hy926细胞VEGFmRNA的影响 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-54页 |
| 4.2 血清外泌体促进烫伤伤口的愈合 | 第51-52页 |
| 4.3 血清外泌体促进烫伤伤口愈合的机理 | 第52-53页 |
| 4.4 血清外泌体促烫伤伤口愈合的临床意义和应用前景 | 第53-54页 |
| 小结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 附录一 英文缩略词表 | 第62-63页 |
| 附录二 在学期间完成的论文 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
