中文摘要 | 第3-5页 |
英文摘要 | 第5-7页 |
引言 | 第11-14页 |
第一章 实验材料 | 第14-17页 |
1 鼻黏膜组织的获取前期准备 | 第14页 |
2 主要试剂 | 第14-15页 |
3 主要实验仪器 | 第15-16页 |
4 手术器械及其他操作器械 | 第16页 |
5 基础试剂的配制 | 第16-17页 |
5.1 0.01M磷酸盐缓冲液(PBS)制备 | 第16页 |
5.2 10%中性福尔马林固定液配置 | 第16-17页 |
第二章 实验方法 | 第17-21页 |
1 取材前的准备 | 第17页 |
2 获取鼻粘膜组织块 | 第17页 |
3 鼻黏膜组织蜡块的制作 | 第17-18页 |
3.1 组织块的固定 | 第17页 |
3.2 冲洗 | 第17页 |
3.3 脱水 | 第17-18页 |
3.4 透明 | 第18页 |
3.5 浸渗 | 第18页 |
3.6 包埋 | 第18页 |
4 鼻黏膜组织切片HE染色 | 第18页 |
5 鼻黏膜组织切片免疫荧光染色 | 第18-21页 |
第三章 实验结果 | 第21-31页 |
1 鼻黏膜组织的HE染色 | 第21-24页 |
1.1 嗅区黏膜的HE染色 | 第21-22页 |
1.2 呼吸区黏膜的HE染色 | 第22-24页 |
2 鼻黏膜组织的免疫荧光染色 | 第24-31页 |
2.1 hOM-MSCs在嗅区黏膜中的免疫荧光染色 | 第24-26页 |
2.2 hOM-MSCs在呼吸区黏膜中的免疫荧光染色 | 第26-27页 |
2.3 hOM-OECs在嗅区黏膜中的免疫荧光染色 | 第27-29页 |
2.4 hOM-OECs在呼吸区黏膜中的免疫荧光染色 | 第29-31页 |
第四章 讨论 | 第31-37页 |
1.鼻黏膜的组织结构 | 第31-32页 |
2 嗅黏膜作为自体取材的优势 | 第32页 |
3 hOM-MSCs的优势以及目前移植在神经修复的疗效 | 第32-33页 |
4.0ECs对微环境的影响以及目前hOM-OECs研究的难点 | 第33-37页 |
结论 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-42页 |
综述 | 第42-51页 |
References | 第48-51页 |
主要缩写词表 | 第51-52页 |
在读期间发表的主要学术论文及参与课题 | 第52-53页 |
致谢 | 第53-54页 |