| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 第一章 论文综述 | 第13-24页 |
| 1.1 番茄营养的研究进展 | 第13-19页 |
| 1.1.1 番茄的营养成分 | 第14-16页 |
| 1.1.2 番茄的保健作用 | 第16-19页 |
| 1.2 野生番茄的研究进展 | 第19-21页 |
| 1.2.1 野生番茄抗虫、抗病的研究 | 第19-20页 |
| 1.2.2 野生番茄中化学物质的研究 | 第20页 |
| 1.2.3 野生番茄基因组的研究 | 第20页 |
| 1.2.4 野生番茄抗逆性的研究 | 第20-21页 |
| 1.2.5 野生番茄组织培养的研究 | 第21页 |
| 1.3 本论文研究的目的和意义 | 第21-24页 |
| 1.3.1 立体依据 | 第21-22页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第22页 |
| 1.3.3 研究的目的和意义 | 第22-24页 |
| 第二章 野生番茄果实的营养评价 | 第24-42页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 水含量的测定 | 第25页 |
| 2.2.2 可溶性固形物 | 第25-26页 |
| 2.2.3 可溶性总糖含量的测定 | 第26页 |
| 2.2.4 蛋白质含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.5 总酸的测定 | 第27页 |
| 2.2.6 有效酸的测定 | 第27页 |
| 2.2.7 果胶含量的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.8 总类黄酮含量的测定 | 第28页 |
| 2.2.9 维生素C含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.10 矿物质元素含量的测定 | 第29页 |
| 2.2.11 氨基酸含量的测定[66] | 第29-30页 |
| 2.2.12 番茄红素含量的测定 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-39页 |
| 2.3.1 野生和栽培番茄水分和固形物含量的比较 | 第30-31页 |
| 2.3.2 野生和栽培番茄可溶性总糖和蛋白质含量的比较 | 第31-33页 |
| 2.3.3 野生和栽培番茄总酸和有效酸的比较 | 第33-34页 |
| 2.3.4 野生和栽培番茄果胶含量的比较 | 第34-35页 |
| 2.3.5 野生和栽培番茄总类黄酮含量的比较 | 第35页 |
| 2.3.6 野生和栽培番茄维生素C含量的比较 | 第35-36页 |
| 2.3.7 野生和栽培番茄矿物质含量的比较 | 第36-37页 |
| 2.3.8 野生和栽培番茄氨基酸含量的比较 | 第37-38页 |
| 2.3.9 野生和栽培番茄番茄红素含量的比较 | 第38-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-42页 |
| 第三章 野生番茄果实抗氧化酶的活性的比较 | 第42-55页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第42-43页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第42页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第42页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第42-43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-47页 |
| 3.2.1 超氧化物歧化酶(SOD)活性测定 | 第43-44页 |
| 3.2.2 过氧化物酶(POD)活性测定 | 第44页 |
| 3.2.3 过氧化氢酶(CAT)活性测定 | 第44-45页 |
| 3.2.4 脂氧合酶(LOX)活性测定 | 第45页 |
| 3.2.5 谷胱甘肽还原酶(GR)活性测定 | 第45-46页 |
| 3.2.6 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性测定 | 第46页 |
| 3.2.7 多酚氧化酶(PPO)活性测定 | 第46-47页 |
| 3.3 结果与分析 | 第47-53页 |
| 3.3.1 野生和栽培番茄SOD活性比较 | 第47-48页 |
| 3.3.2 野生和栽培番茄POD活性的比较 | 第48页 |
| 3.3.3 野生和栽培番茄CAT活性的比较 | 第48-49页 |
| 3.3.4 野生和栽培番茄LOX活性的比较 | 第49-50页 |
| 3.3.5 野生和栽培番茄GR活性的比较 | 第50-51页 |
| 3.3.6 野生和栽培番茄APX活性的比较 | 第51-52页 |
| 3.3.7 野生和栽培番茄PPO活性的比较 | 第52-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-55页 |
| 第四章 P7基因的构建 | 第55-70页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第55-56页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第55页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第55页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第55-56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-63页 |
| 4.2.1 番茄种子的消毒和发芽 | 第56页 |
| 4.2.2 番茄材料的盐处理及冻存 | 第56页 |
| 4.2.3 植物RNA的提取(LiCl沉淀法) | 第56-57页 |
| 4.2.4 反转录合成cDNA | 第57-58页 |
| 4.2.5 P7序列的获得及同源比对分析 | 第58页 |
| 4.2.6 引物设计 | 第58-59页 |
| 4.2.7 PCR扩增目的片段 | 第59页 |
| 4.2.8 柱离心式胶回收PCR产物 | 第59-60页 |
| 4.2.9 将PCR片段的连接(Gateway入门克隆的构建) | 第60-62页 |
| 4.2.10 构建表达载体 | 第62-63页 |
| 4.3 结果与分析 | 第63-70页 |
| 4.3.1 P7序列的生物信息学分析 | 第63-65页 |
| 4.3.2 p7蛋白与RING finger家族成员的同源性分析 | 第65-66页 |
| 4.3.3 P7基因在番茄中的表达模式分析 | 第66页 |
| 4.3.4 P7的构建 | 第66-70页 |
| 第五章 总结 | 第70-72页 |
| 第六章 下一步计划及展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
