| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-22页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 自组装多肽的概述 | 第9-15页 |
| 1.2.1 自组装多肽RADA16-I及其功能化 | 第10-11页 |
| 1.2.2 现有RADA16-I型多肽自组装机理的研究 | 第11-13页 |
| 1.2.3 自组装多肽在神经修复领域的应用 | 第13-15页 |
| 1.3 静电纺丝技术的概述 | 第15-20页 |
| 1.3.1 静电纺丝的原理及影响因素 | 第16-18页 |
| 1.3.2 静电纺丝在神经修复领域的应用 | 第18-20页 |
| 1.4 课题的研究意义和主要内容 | 第20-22页 |
| 1.4.1 课题的研究目的及意义 | 第20页 |
| 1.4.2 课题的主要研究内容 | 第20-21页 |
| 1.4.3 课题的创新之处 | 第21-22页 |
| 第二章 多肽自组装机理的探究 | 第22-38页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 实验部分 | 第22-23页 |
| 2.2.1 原材料及药品 | 第23页 |
| 2.2.2 实验所用仪器 | 第23页 |
| 2.3 材料表征方法及样品制备 | 第23-26页 |
| 2.3.1 多肽原液制备 | 第23-24页 |
| 2.3.2 圆二色谱 | 第24-25页 |
| 2.3.3 原子力扫描探针显微镜 | 第25页 |
| 2.3.4 透射电子显微镜 | 第25页 |
| 2.3.5 分子动力学模拟 | 第25-26页 |
| 2.3.6 尼罗红荧光探针 | 第26页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第26-37页 |
| 2.4.1 SAP自组装过程的结构分析 | 第26-28页 |
| 2.4.2 SAP自组装过程的形貌分析 | 第28-31页 |
| 2.4.3 SAP自组装过程的分子动力学模拟 | 第31-33页 |
| 2.4.4 SAP自组装过程的荧光探针结果分析 | 第33-36页 |
| 2.4.5 SAP经HFIP溶解后的自组装复原能力表征 | 第36-37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 PLLA/SAP支架的制备与表征 | 第38-45页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验部分 | 第38-39页 |
| 3.2.1 原材料及药品 | 第38页 |
| 3.2.2 实验所用仪器 | 第38-39页 |
| 3.3 材料表征方法及样品制备 | 第39-40页 |
| 3.3.1 静电纺丝PLLA/SAP支架的制备 | 第39-40页 |
| 3.3.2 扫描电子显微镜 | 第40页 |
| 3.3.3 X射线光电子能谱 | 第40页 |
| 3.3.4 质谱 | 第40页 |
| 3.3.5 接触角 | 第40页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第40-44页 |
| 3.4.1 PLLA/SAP支架的形貌表征 | 第40-42页 |
| 3.4.2 PLLA/SAP支架中SAP负载情况 | 第42页 |
| 3.4.3 PLLA/SAP支架中SAP的完整性 | 第42-43页 |
| 3.4.4 PLLA/SAP支架的疏水性检测 | 第43-44页 |
| 3.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第四章 PLLA/SAP支架在神经再生方面的应用研究 | 第45-52页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 实验部分 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验所用试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.2 实验所用仪器 | 第46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-48页 |
| 4.3.1 神经干细胞培养 | 第46-47页 |
| 4.3.2 细胞免疫荧光染色 | 第47-48页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第48-51页 |
| 4.4.1 神经干细胞的分化 | 第48页 |
| 4.4.2 神经元形态的重建及量化分析 | 第48-49页 |
| 4.4.3 神经元的发育和成熟 | 第49-51页 |
| 4.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第五章 全文总结 | 第52-54页 |
| 5.1 主要结论 | 第52-53页 |
| 5.2 现存问题及展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 硕士期间科研成果 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
