中文摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3页 |
中文文摘 | 第4-9页 |
绪论 | 第9-19页 |
1 肾上腺髓质素及其受体 | 第9-12页 |
1.1 肾上腺髓质素(Adrenomedullin) | 第9-10页 |
1.2 肾上腺髓质素受体 | 第10-11页 |
1.3 AM及受体与疼痛 | 第11-12页 |
2 胶质细胞(Glial cell) | 第12-17页 |
2.1 星形胶质细胞(astrocyte) | 第13页 |
2.2 小胶质细胞(microglia) | 第13-17页 |
2.2.1 小胶质细胞的活化与疼痛 | 第14-17页 |
3 本课题的立题意义 | 第17-19页 |
第一章 小胶质细胞的原代培养、分离纯化及纯度鉴定 | 第19-35页 |
前言 | 第19页 |
1.1 实验材料 | 第19-21页 |
1.1.1 实验动物 | 第19-20页 |
1.1.2 实验仪器和器材工具 | 第20页 |
1.1.3 主要实验试剂 | 第20页 |
1.1.4 实验所需的部分试剂、溶液的配制 | 第20-21页 |
1.2 实验方法 | 第21-24页 |
1.2.1 小胶质细胞的原代培养 | 第21-22页 |
1.2.2 小胶质细胞的纯化 | 第22-24页 |
1.2.3 小胶质细胞纯度鉴定 | 第24页 |
1.3 统计学处理 | 第24-25页 |
1.4 实验结果 | 第25-30页 |
1.4.1 神经胶质细胞混合培养 | 第25-27页 |
1.4.2 纯化出的小胶质细胞 | 第27-28页 |
1.4.3 小胶质细胞免疫细胞化学鉴定 | 第28-29页 |
1.4.4 小胶质细胞的纯度统计 | 第29-30页 |
1.5 讨论 | 第30-35页 |
第二章 AM对小胶质细胞的作用——小胶质细胞的形态变化 | 第35-45页 |
前言 | 第35页 |
2.1 实验材料 | 第35-37页 |
2.1.1 实验动物 | 第35页 |
2.1.2 主要试验仪器和器材工具 | 第35-36页 |
2.1.3 主要实验试剂 | 第36页 |
2.1.4 实验所需部分试剂的配制 | 第36-37页 |
2.2 实验方法 | 第37-39页 |
2.2.1 小胶质细胞的培养和分离纯化 | 第37-38页 |
2.2.2 实验分组和药物处理 | 第38页 |
2.2.3 免疫细胞化学染色 | 第38-39页 |
2.3 实验结果 | 第39-43页 |
2.3.1 给药AM后小胶质细胞的显微观察 | 第39-41页 |
2.3.2 小胶质细胞的免疫细胞化学染色鉴定 | 第41-43页 |
2.4 讨论 | 第43-45页 |
第三章 AM对小胶质细胞的作用——AM受体的表达变化 | 第45-63页 |
前言 | 第45页 |
3.1 实验材料 | 第45-49页 |
3.1.1 实验动物 | 第45-46页 |
3.1.2 实验仪器和器材工具 | 第46页 |
3.1.3 主要实验试剂 | 第46页 |
3.1.4 实验所需的部分试剂、溶液的配制 | 第46-47页 |
3.1.5 本章实验所需引物序列 | 第47-48页 |
3.1.6 实验中所使用的引物序列与NCBI的基因库中该基因序列的对比 | 第48-49页 |
3.2 实验方法 | 第49-54页 |
3.2.1 小胶质细胞的原代培养 | 第49-50页 |
3.2.2 小胶质细胞的分离纯化 | 第50页 |
3.2.3 小胶质细胞的纯培养和药物处理 | 第50-51页 |
3.2.4 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第51-54页 |
3.3 统计学处理 | 第54-55页 |
3.4 实验结果 | 第55-61页 |
3.4.1 RNA完整性检测结果 | 第55页 |
3.4.2 引物扩增效率的鉴定 | 第55-56页 |
3.4.3 实时荧光定量PCR产物的特异性鉴定 | 第56-57页 |
3.4.3.1 实时定量PCR实验的熔解曲线 | 第56-57页 |
3.4.3.2 实时定量PCR产物的电泳图谱 | 第57页 |
3.4.4 AM受体和CGRP受体的mRNA的相对表达量 | 第57-61页 |
3.5 讨论 | 第61-63页 |
第四章 结论 | 第63-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第71-73页 |
致谢 | 第73-75页 |
个人简历 | 第75-79页 |