| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 微藻的生物价值研究概况 | 第12-13页 |
| 1.2 微藻培养方式 | 第13-14页 |
| 1.2.1 培养基成分 | 第13页 |
| 1.2.2 培养条件 | 第13页 |
| 1.2.3 培养方式 | 第13-14页 |
| 1.3 小球藻的生物学特性和应用概述 | 第14-15页 |
| 1.3.1 小球藻的分类及特性 | 第14页 |
| 1.3.2 小球藻的大规模培养方式 | 第14页 |
| 1.3.3 小球藻的商业价值 | 第14-15页 |
| 1.4 油脂和淀粉的合成 | 第15-17页 |
| 1.4.1 油脂的合成 | 第15-16页 |
| 1.4.2 淀粉的合成 | 第16-17页 |
| 1.5 国内外研究进展 | 第17-19页 |
| 1.5.1 影响油脂和淀粉积累的因素的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.5.2 基于转录组测序技术的淀粉和油脂代谢途径的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.6 研究意义、内容和创新 | 第19-21页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第19-20页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第20页 |
| 1.6.3 创新之处 | 第20-21页 |
| 第二章 G32藻种的培养及鉴定 | 第21-30页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第21-23页 |
| 2.1.1 主要实验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 主要实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.3 BBM培养液配方 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 G32藻株的培养 | 第23-24页 |
| 2.2.2 PCR扩增G32藻的18S rDNA | 第24-25页 |
| 2.2.3 绘制G32藻的系统发育树 | 第25页 |
| 2.2.4 G32藻的耐盐度实验 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与讨论分析 | 第26-29页 |
| 2.3.1 G32藻株的生长曲线 | 第26页 |
| 2.3.2 18S rDNA扩增 | 第26-27页 |
| 2.3.3 18S rDNA构建G32藻的系统发育树 | 第27-28页 |
| 2.3.4 在不同盐度下G32藻的生长曲线 | 第28-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 G32藻培养条件的优化及生长情况的研究 | 第30-40页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 主要实验材料 | 第30页 |
| 3.1.2 主要实验仪器 | 第30-31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 优化G32藻的培养条件 | 第31-32页 |
| 3.2.2 分光光度计和干重法测G32藻的细胞密度与生物量 | 第32页 |
| 3.2.3 DNS法和pH计检测培养液中的葡萄糖含量和pH值 | 第32-33页 |
| 3.2.4 测两种葡萄糖浓度下G32藻的PSⅡ最大光化合效率 | 第33页 |
| 3.3 结果讨论与分析 | 第33-39页 |
| 3.3.1 G32藻的培养条件优化后的生长曲线 | 第33-35页 |
| 3.3.2 低糖和高糖培养下的G32藻的细胞密度与生物量 | 第35-37页 |
| 3.3.3 低糖和高糖培养液中的葡萄糖利用情况和pH值 | 第37-38页 |
| 3.3.4 低糖和高糖条件下G32藻的PSⅡ最大光化合效率 | 第38-39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 G32藻细胞内的淀粉与油脂 | 第40-50页 |
| 4.1 实验材料和仪器 | 第41页 |
| 4.1.1 主要实验材料 | 第41页 |
| 4.1.2 主要实验仪器 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 4.2.1 Bligh-Dyer重量法测低糖和高糖条件下G32藻细胞内的总油脂含量 | 第41-42页 |
| 4.2.2 苯酚硫酸法测低糖和高糖条件下G32藻细胞内的淀粉含量 | 第42-43页 |
| 4.2.3 流式细胞仪检测两种葡萄糖浓度下的G32藻细胞内的中性油脂含量 | 第43页 |
| 4.2.4 透射电镜观察低糖和高糖条件下G32藻细胞内的淀粉粒 | 第43-44页 |
| 4.3 结果讨论与分析 | 第44-48页 |
| 4.3.1 低糖和高糖培养条件下G32微藻细胞内的油脂含量 | 第44-45页 |
| 4.3.2 低糖和高糖条件下G32微藻细胞内的淀粉含量 | 第45-47页 |
| 4.3.3 两种葡萄糖浓度下的G32藻细胞内的中性油脂含量 | 第47-48页 |
| 4.3.4 低糖和高糖条件下G32藻细胞内的淀粉透射电镜观察结果 | 第48页 |
| 4.4 本章小结 | 第48-50页 |
| 第五章 G32藻细胞的培养条件交叉互换的研究 | 第50-60页 |
| 5.1 实验材料和仪器 | 第50-51页 |
| 5.1.1 主要实验材料 | 第50页 |
| 5.1.2 主要实验仪器 | 第50-51页 |
| 5.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 5.2.1 分光光度计和干重法测葡萄糖浓度交叉互换后的细胞密度和生物量 | 第51-52页 |
| 5.2.2 DNS法和PAM测葡萄糖浓度交叉互换后G32藻的葡萄糖利用率和PSⅡ最大光化合效率 | 第52页 |
| 5.2.3 Bligh-Dyer重量法和苯酚硫酸法测葡萄糖浓度交叉互换后G32藻细胞内的总油脂和淀粉含量 | 第52-53页 |
| 5.2.4 蔗糖密度梯度离心法比较适应葡萄糖浓度的G32藻细胞和葡萄糖浓度交叉互换后的G32藻细胞的相对密度 | 第53-54页 |
| 5.3 结果讨论与分析 | 第54-59页 |
| 5.3.1 葡萄糖浓度交叉互换后G32藻细胞密度和生物量 | 第54-55页 |
| 5.3.2 H2L和L2H培养液中G32藻的葡萄糖利用率和PSⅡ最大光化合效率 | 第55-56页 |
| 5.3.3 L2H和H2L条件下G32藻细胞内的总油脂和淀粉含量 | 第56-57页 |
| 5.3.4 四种条件下的G32藻细胞的蔗糖密度梯度离心结果 | 第57-59页 |
| 5.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第六章 G32藻的转录组研究 | 第60-77页 |
| 6.1 实验材料和仪器 | 第60-61页 |
| 6.1.1 主要实验材料 | 第60页 |
| 6.1.2 主要实验仪器 | 第60-61页 |
| 6.2 实验方法 | 第61-64页 |
| 6.2.1 RNA的提取和数据检测 | 第61-62页 |
| 6.2.2 G32藻转录组的重新组装和功能注释 | 第62-63页 |
| 6.2.3 基于代谢途径的滑窗法分析差异表达值相似的ESTs | 第63页 |
| 6.2.4 研究与葡萄糖浓度变化相关的差异转录基因编码的酶参与的代谢途径 | 第63页 |
| 6.2.5 研究在培养液的葡萄糖浓度变化下参与四种代谢途径的酶对应ESTs的转录水平以及通路流向 | 第63-64页 |
| 6.3 结果讨论与分析 | 第64-76页 |
| 6.3.1 RNA凝胶电泳 | 第64-65页 |
| 6.3.2 转录组数据的分析结果 | 第65-67页 |
| 6.3.3 低糖和高糖培养条件下的细胞内的关联ESTs富集的代谢途径功能 | 第67-68页 |
| 6.3.4 葡萄糖浓度交叉互换后下的ESTs转录水平 | 第68-70页 |
| 6.3.5 差异表达ESTs在油脂和淀粉代谢途径中的转录水平以及其编码的酶 | 第70-72页 |
| 6.3.6 葡萄糖浓度变化下参与四种代谢途径的酶和通路流向 | 第72-76页 |
| 6.4 本章小结 | 第76-77页 |
| 第七章 结论与展望 | 第77-80页 |
| 7.1 结论 | 第77-78页 |
| 7.2 展望 | 第78-80页 |
| 作者简介 | 第80-81页 |
| 附录 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-88页 |
