| 摘要 | 第2-3页 |
| abstract | 第3-4页 |
| 第一章 绪论 | 第7-14页 |
| 1.1 神经胶质瘤 | 第7页 |
| 1.2 microRNA | 第7-9页 |
| 1.3 miRNA与胶质瘤 | 第9页 |
| 1.4 疱疹病毒 | 第9-14页 |
| 第二章 实验材料 | 第14-18页 |
| 2.1 组织样本 | 第14页 |
| 2.2 细胞株 | 第14页 |
| 2.3 质粒 | 第14页 |
| 2.4 主要实验仪器设备 | 第14-15页 |
| 2.5 主要实验试剂来源及配制方法 | 第15-18页 |
| 第三章 实验方法 | 第18-32页 |
| 3.1 细胞培养 | 第18-19页 |
| 3.2 microRNA的筛选 | 第19页 |
| 3.3 重组质粒的构建及扩增 | 第19-22页 |
| 3.4 质粒的瞬时转染 | 第22-23页 |
| 3.5 RNA的提取 | 第23-24页 |
| 3.6 逆转录 | 第24-26页 |
| 3.7 实时荧光定量PCR分析神经胶质瘤组织及细胞中ATF5/miR-141-3的表达水平 | 第26-27页 |
| 3.8 荧光素酶报告基因检测miR-141-3p与ATF53’-UTR结合情况 | 第27-28页 |
| 3.9 CCK8检测miR-141-3p对胶质瘤细胞增殖能力的影响 | 第28页 |
| 3.10 流式细胞术检测miR-141-3p对胶质瘤细胞凋亡能力的影响 | 第28页 |
| 3.11 Western-blot检测miR-141-3p对胶质瘤细胞中ATF5蛋白表达的影响 | 第28-31页 |
| 3.12 统计学分析 | 第31-32页 |
| 第四章 结果 | 第32-46页 |
| 4.1 miR-141-3p靶向调控ATF5基因 | 第32-34页 |
| 4.2 ATF5在神经胶质瘤组织细胞和正常组织细胞中的表达差异 | 第34-36页 |
| 4.3 ATF5对U87MG细胞增殖、细胞凋亡的影响 | 第36-39页 |
| 4.4 miR-141-3p在神经胶质瘤和正常组织细胞中的表达差异 | 第39-40页 |
| 4.5 miR-141-3p对ATF5表达的影响 | 第40-42页 |
| 4.6 miR-141-3p负调控ATF5对胶质瘤细胞增殖的影响 | 第42页 |
| 4.7 miR-141-3p负调控ATF5对胶质瘤细胞凋亡的影响 | 第42-43页 |
| 4.8 上调ATF5后,miR-141-3p对胶质瘤细胞增殖、细胞凋亡的影响 | 第43-46页 |
| 第五章 讨论 | 第46-49页 |
| 第六章 结论与展望 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
