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幼年缺血性脑卒中作用机制的研究

中文摘要第2-4页
Abstract第4-6页
符号说明第9-11页
引言第11-14页
第一部分: 幼年局灶性缺血再灌注引起的神经损伤与自噬相关蛋白变化之间关系的研究第14-30页
    1. 实验材料第14-16页
        1.1 实验动物第14-15页
        1.2 主要实验试剂材料第15页
        1.3 实验仪器第15-16页
    2 实验方法第16-19页
        2.1 大鼠大脑中动脉闭塞(MCAO)模型的制备以及脑组织的处理备用第16页
        2.2 神经功能评分第16-17页
        2.3 TTC染色第17页
        2.4 免疫组织化学染色第17页
        2.5 免疫荧光染色第17-18页
        2.6 全蛋白提取第18页
        2.7 BCA蛋白定量法第18页
        2.8 蛋白免疫印迹第18-19页
        2.9 统计分析第19页
    3. 结果与分析第19-27页
        3.1 缺血再灌注后幼、成SD大鼠神经功能评分的差异第19-20页
        3.2 缺血再灌注后幼、成SD大鼠脑梗死体积的差异第20-22页
        3.3 缺血再灌注后幼、成SD大鼠NeuN免疫染色的差异第22-23页
        3.4 缺血再灌注后幼、成SD大鼠胶质细胞免疫染色的差异第23-24页
        3.5 缺血再灌注后幼、成SD大鼠Beclin-1荧光免疫染色的差异第24-25页
        3.6 缺血再灌注后幼、成SD大鼠自噬相关蛋白的变化第25-26页
        3.7 缺血再灌注后幼、成SD大鼠凋亡相关蛋白的变化第26-27页
    4. 讨论第27-30页
第二部分: 幼年全脑缺血再灌注引起的神经损伤与IGF1及其受体表达变化之间关系的研究第30-45页
    1. 实验材料第30-32页
        1.1 实验动物第30-31页
        1.2 主要实验试剂材料第31页
        1.3 实验仪器第31-32页
    2 实验方法第32-36页
        2.1 缺血性脑卒中模型的制备以及脑组织的处理备用第32页
        2.2 免疫组织化学染色第32-33页
        2.3 脑组织RNA提取第33页
        2.4 反转录cDNA第一链的合成第33-34页
        2.5 实时荧光定量RT-PCR分析第34-35页
        2.6 全蛋白提取第35页
        2.7 BCA蛋白定量法第35页
        2.8 蛋白免疫印迹第35页
        2.9 统计分析第35-36页
    3. 结果与分析第36-43页
        3.1 缺血/再灌注后幼、成年沙鼠的海马CA1/2/3区神经损伤情况第36页
        3.2 缺血/再灌注后沙鼠海马CA1区IGF1、IGF1R免疫活化的情况第36-40页
        3.3 缺血/再灌注后沙鼠海马CA1区IGF-1、IGF-1R蛋白及RNA水平的变化第40-41页
        3.4 缺血/再灌注后幼成年沙鼠海马CA1区PI-3K/AKT信号通路蛋白水平的变化第41-43页
    4.讨论第43-45页
参考文献第45-52页
文献综述第52-60页
    参考文献第56-60页
致谢第60-61页
攻读学位期间发表的学术论文目录第61-62页

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