| 英文缩略词表(Abbreviation) | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 第一部分 利拉鲁肽对动脉硬化大鼠模型临床疗效的评价 | 第15-29页 |
| 1 引言 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-22页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 实验干预药物 | 第16页 |
| 2.3 主要实验试剂 | 第16-17页 |
| 2.4 实验仪器及设备 | 第17-18页 |
| 2.5 实验方法 | 第18-22页 |
| 2.5.1 建立动脉硬化大鼠模型及药物干预 | 第18页 |
| 2.5.2 大鼠处死及标本采集和检测方法 | 第18页 |
| 2.5.3 大鼠肠系膜上动脉舒张功能检测 | 第18-19页 |
| 2.5.4 ELISA检测血清FINS水平 | 第19页 |
| 2.5.5 ELISA检测血清ET-1水平 | 第19-20页 |
| 2.5.6 血管组织病理切片及HE染色 | 第20-21页 |
| 2.5.7 Masson染色 | 第21页 |
| 2.5.8 硝酸还原法测定血清NO浓度 | 第21-22页 |
| 2.5.9 统计学处理 | 第22页 |
| 3 实验结果 | 第22-26页 |
| 3.1 大鼠体重及血清TG、CHO、LDL、FBG、FINS变化 | 第22-23页 |
| 3.2 大鼠肠系膜上动脉血管张力检测 | 第23-24页 |
| 3.3 大鼠血管病理学改变 | 第24-25页 |
| 3.4 血清NO、ET-1变化 | 第25-26页 |
| 4 讨论 | 第26-28页 |
| 5 结论 | 第28-29页 |
| 第二部分 利拉鲁肽对动脉硬化大鼠模型作用机制的研究 | 第29-40页 |
| 1 引言 | 第29-30页 |
| 2 材料与方法 | 第30-34页 |
| 2.1 实验试剂 | 第30-31页 |
| 2.2 实验仪器设备 | 第31页 |
| 2.3 实验试剂配制 | 第31-32页 |
| 2.4 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.4.1 血管匀浆制备 | 第32页 |
| 2.4.2 ELISA检测大鼠血清PDGF-B的表达水平 | 第32-33页 |
| 2.4.3 Westernblot检测大鼠血管组织PDGF-B、ERK1/2及p-ERK1/2的表达 | 第33-34页 |
| 2.4.4 统计学处理 | 第34页 |
| 3 结果 | 第34-37页 |
| 3.1 利拉鲁肽组大鼠血清及血管组织PDGF-B的表达水平 | 第34-36页 |
| 3.2 利拉鲁肽组大鼠血管组织p-ERK/ERK表达水平的变化 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-40页 |
| 4.1 PDGF-B与血管性病变以及动脉硬化的关系 | 第37-38页 |
| 4.2 利拉鲁肽抑制PDGF-B的表达 | 第38-39页 |
| 4.3 利拉鲁肽对MAPK/ERK-PDGF-B信号传导通路的影响 | 第39-40页 |
| 5 小结 | 第40页 |
| 全文结论 | 第40-41页 |
| 论文创新点 | 第41页 |
| 缺陷与展望 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 附录 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-61页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
