| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 1 引言 | 第9-19页 |
| 1.1 立题依据 | 第9-10页 |
| 1.2 SSR研究进展 | 第10-13页 |
| 1.2.1 选择EST-SSR的优势 | 第11-12页 |
| 1.2.2 EST-SSR的组成和分布 | 第12-13页 |
| 1.2.3 EST-SSR的进展 | 第13页 |
| 1.3 樟子松遗传多样性研究进展 | 第13-17页 |
| 1.3.1 樟子松群体结构的研究 | 第13-14页 |
| 1.3.2 樟子松遗传变异的研究 | 第14-15页 |
| 1.3.3 樟子松遗传变异与环境的关系 | 第15-17页 |
| 1.4 技术路线 | 第17页 |
| 1.5 樟子松遗传多样性研究的目的意义 | 第17-18页 |
| 1.6 樟子松遗传多样性研究所要解决的问题 | 第18页 |
| 1.7 樟子松遗传多样性研究的创新之处 | 第18-19页 |
| 2 樟子松EST-SSR引物的开发 | 第19-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-23页 |
| 2.2.1 樟子松SSR引物的设计 | 第19-20页 |
| 2.2.2 樟子松DNA提取 | 第20-21页 |
| 2.2.3 电泳检测 | 第21页 |
| 2.2.4 樟子松EST-SSR反应条件的优化 | 第21-23页 |
| 2.2.5 樟子松EST-SSR引物的筛选 | 第23页 |
| 2.3 实验结果 | 第23-29页 |
| 2.3.1 樟子松EST-SSR反应条件优化 | 第23-28页 |
| 2.3.2 樟子松EST-SSR引物筛选 | 第28-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-33页 |
| 2.4.1 反应体系的优化 | 第29-30页 |
| 2.4.2 樟子松EST-SSR特点 | 第30-31页 |
| 2.4.3 扩增位点的改良分析 | 第31-32页 |
| 2.4.4 EST-SSR位点潜在功能分析 | 第32-33页 |
| 3 不同地理环境下樟子松的遗传多样性 | 第33-49页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.2 试验方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 样本处理 | 第34页 |
| 3.2.2 PCR扩增 | 第34页 |
| 3.2.3 聚丙烯酰胺凝胶的制备 | 第34-35页 |
| 3.2.4 扩增产物的分离 | 第35页 |
| 3.2.5 银染鉴定 | 第35-36页 |
| 3.3 实验数据的统计分析 | 第36-38页 |
| 3.3.1 遗传多样性评价标准 | 第36-38页 |
| 3.3.2 环境变量与EST-SSR多元回归分析 | 第38页 |
| 3.4 结果 | 第38-44页 |
| 3.4.1 不同位点对群体多样性贡献不同 | 第38-39页 |
| 3.4.2 榆林群体遗传多样性最高 | 第39-40页 |
| 3.4.3 群体之间相对稳定,不容易分化 | 第40-41页 |
| 3.4.4 遗传距离和地理距离正相关 | 第41-43页 |
| 3.4.5 章古台群体不符合自然状态下的理想群体 | 第43页 |
| 3.4.6 地理纬度是影响樟子松遗传变异的重要因素 | 第43-44页 |
| 3.5 讨论 | 第44-49页 |
| 3.5.1 不同地理环境中遗传多样性差异的原因 | 第44-45页 |
| 3.5.2 樟子松群体内和群体间分化的差异 | 第45-46页 |
| 3.5.3 环境因素与遗传多样性的关系 | 第46-47页 |
| 3.5.4 樟子松遗传资源的保护和利用 | 第47-49页 |
| 4 结论 | 第49-51页 |
| 附录 | 第51-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 个人简介 | 第69-71页 |
| 导师简介 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73页 |