| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 文献综述 | 第13-20页 |
| 第一章 细胞自噬在动物病毒致病过程中的作用研究进展 | 第13-20页 |
| 1.1 细胞自噬及其调控机制 | 第13-17页 |
| 1.1.1 细胞自噬的分类及生理意义 | 第14-15页 |
| 1.1.2 细胞自噬的发生过程及核心信号通路 | 第15-16页 |
| 1.1.3 参与细胞自噬调控的关键基因及其作用 | 第16-17页 |
| 1.2 细胞自噬在动物病毒致病过程中的作用 | 第17-19页 |
| 1.2.1 动物病毒感染诱发细胞自噬的途径 | 第17-18页 |
| 1.2.2 细胞自噬在动物病毒感染过程中的作用 | 第18页 |
| 1.2.3 细胞自噬对病毒复制的调控作用 | 第18-19页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第19-20页 |
| 试验研究 | 第20-44页 |
| 第二章 PPV感染PK-15细胞诱导细胞自噬 | 第20-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 细胞及毒株 | 第20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第21页 |
| 2.1.4 试剂的配制 | 第21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 PK-15细胞的培养及PPV的扩增 | 第21-22页 |
| 2.2.2 PPV的DNA检测及毒力检验 | 第22-23页 |
| 2.2.3 不同MOIPPV感染后细胞自噬相关蛋白检测 | 第23-24页 |
| 2.2.4 PPV感染不同时间后细胞自噬相关蛋白的检测 | 第24页 |
| 2.2.5 GFP-LC3质粒转染感染梯度组检测自噬体形成 | 第24页 |
| 2.2.6 GFP-LC3质粒转染感染时间组检测自噬体形成 | 第24页 |
| 2.3 结果 | 第24-29页 |
| 2.3.1 PPV的扩增 | 第24-25页 |
| 2.3.2 PPV的DNA检测及毒力鉴定 | 第25-26页 |
| 2.3.3 不同MOIPPV感染后细胞自噬相关蛋白的表达 | 第26页 |
| 2.3.4 PPV感染PK-15细胞不同时间后自噬相关蛋白表达情况 | 第26-27页 |
| 2.3.5 GFP-LC3转染感染梯度组中自噬体的检测 | 第27-28页 |
| 2.3.6 GFP-LC3转染感染时间组中自噬体的检测 | 第28-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-30页 |
| 2.5 小结 | 第30-31页 |
| 第三章 细胞自噬对PPV复制的调控作用 | 第31-44页 |
| 3.1 试验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.1 细胞及毒株 | 第31页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第31-32页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第32页 |
| 3.1.4 试剂的配制 | 第32页 |
| 3.2 试验方法 | 第32-35页 |
| 3.2.1 细胞活力检测 | 第32页 |
| 3.2.2 构建PK-15细胞自噬模型 | 第32页 |
| 3.2.3 细胞自噬对PPV复制的影响 | 第32-34页 |
| 3.2.4 siATG5干扰细胞自噬关键基因atg | 第34-35页 |
| 3.2.5 siATG5对PPV复制的影响 | 第35页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第35页 |
| 3.3 结果 | 第35-41页 |
| 3.3.1 MTT法检测EBSS对细胞活力的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.2 EBSS诱导细胞自噬产生 | 第36-37页 |
| 3.3.3 细胞自噬对PPV复制的影响 | 第37-39页 |
| 3.3.4 siATG5干扰细胞自噬关键基因atg | 第39-40页 |
| 3.3.5 siATG5对PPV复制的影响 | 第40-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41-42页 |
| 3.5 小结 | 第42-44页 |
| 结论与创新点 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 缩略词 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 作者简介 | 第53页 |
