首页--生物科学论文--遗传学论文--遗传学分支学科论文--发生遗传学(发育遗传学)、生理遗传学论文

Cathepsin b基因在斑马鱼早期胚胎发育中作用的研究

摘要第6-8页
ABSTRACT第8-9页
符号说明第10-11页
第一章 Cathepsin ba基因在斑马鱼胚胎发育早期的作用第11-60页
    前言第11-17页
        1.1 Cathespins家族介绍第11-14页
        1.2 Cathepsin B研究进展第14-15页
        1.3 斑马鱼应用于多种人类疾病研究第15-17页
    1 实验材料第17-21页
        1.1 实验动物第17页
        1.2 载体、菌株、工具酶和试剂盒第17-18页
        1.3 其他试剂第18-21页
        1.4 实验仪器第21页
    2 实验方法第21-39页
        2.1 利用CRISPR/Cas9技术获得斑马鱼cathepsin ba基因突变体第21-31页
        2.2 观察cathepsin ba基因突变体早期胚胎发育情况第31页
        2.3 RT-PCR与qPCR分析cathepsin ba在斑马鱼各发育时期中的表达第31-35页
        2.4 RT-PCR分析ctsba~(-/-)突变体中mRNA表达情况第35-36页
        2.5 原位杂交分析cathepsin ba在斑马鱼早期胚胎表达第36-39页
        2.6 心脏标记基因原位杂交分析斑马鱼ctsba~(-/-)突变体心室发育第39页
        2.7 背腹轴标记基因原位杂交分析斑马鱼ctsba突变体背腹轴发育第39页
        2.8 利用三胚层标记基因原位杂交分析ctsba~(-/-)突变体胚层发育第39页
    3 结果与讨论第39-57页
        3.1 利用CRISPR/Cas9技术筛选获得cathepsin ba突变体第39-45页
        3.2 cathepsin ba纯合突变体早期发育存在广泛畸形及隐性致死效应第45-48页
        3.3 RT-PCR结果显示ctsba~(-/-)突变体中发生NMD现象第48页
        3.4 RT-PCR与qPCR分析cathepsin ba基因在斑马鱼中呈现母源性及合子表达第48-49页
        3.5 原位杂交分析cathepsin ba基因在斑马鱼早期胚胎中泛表达第49-50页
        3.6 心脏标记基因原位杂交显示斑马鱼ctsba~(-/-)突变体心室发育无异常第50-51页
        3.7 背腹轴标记基因原位杂交表明斑马鱼ctsba~(-/-)突变体背部发育异常第51-53页
        3.8 三胚层标记基因原位杂交显示ctsba~(-/-)突变体各胚层发育异常第53-57页
    讨论第57-60页
第二章 Cathepsin bb基因在斑马鱼胚胎发育早期的作用第60-67页
    前言第60页
    1 实验材料第60-61页
        1.1 实验动物第60页
        1.2 载体、菌株、工具酶和试剂盒第60页
        1.3 其他试剂第60页
        1.4 实验仪器第60-61页
    2 实验方法第61-62页
        2.1 利用CRISPR/Cas9技术获得斑马鱼cathepsin bb基因突变体第61页
        2.2 观察cathepsin bb基因突变体早期胚胎发育情况第61页
        2.3 RT-PCR分析cathepsin bb在斑马鱼各发育时期中的表达第61页
        2.4 RT-PCR分析cathepsin bb基因在斑马鱼各器官组织中的表达第61-62页
    3 结果与讨论第62-66页
        3.1 利用CRISPR/Cas9技术筛选获得cathepsin bb突变体第62-65页
        3.2 观察cathepsin bb基因突变体早期胚胎发育、成体正常第65页
        3.3 RT-PCR初步检测cathepsin bb基因早期各发育时期不表达第65-66页
        3.4 RT-PCR检测cathepsin bb基因在斑马鱼各组织器官中的表达情况第66页
    讨论第66-67页
参考文献第67-71页
致谢第71-72页
学位论文评阅及答辩情况表第72页

论文共72页,点击 下载论文
上一篇:小稻大蚊全虫态形态学记录及其在辽宁、吉林东部地区的种群差异性分析
下一篇:里氏木霉异源表达纤维二糖水解酶Te-Cel7A与系统分析蛋白酶Spt1功能