| 英文缩写词表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 前言 | 第10-19页 |
| 1 炎症发生机理与信号通路研究 | 第10-11页 |
| 2. 天然药物治疗炎症的研究现状 | 第11-13页 |
| 3. 丹参的研究现状及本研究的意义 | 第13-14页 |
| 参考文献 | 第14-19页 |
| 第一部分:SMLE的提取工艺与质控的研究 | 第19-29页 |
| 1.1 实验材料 | 第19页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第19页 |
| 1.1.2 药物与实验试剂 | 第19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 1.2.1 乙醇浓度对丹参浸出物体外抗炎效力的影响 | 第19页 |
| 1.2.2 丹参抗炎主要部位的确认 | 第19-20页 |
| 1.2.3 SMLE的提取 | 第20页 |
| 1.2.4 SMLE总酮含量测定 | 第20页 |
| 1.2.5 SMLE中丹参酮ⅡA,隐丹参酮,丹参酮Ⅰ,二氢丹参酮Ⅰ含量测定 | 第20-21页 |
| 1.3 结果 | 第21-28页 |
| 1.3.1 乙醇浓度对丹参浸出物体外抗炎效力的影响 | 第21页 |
| 1.3.2 丹参抗炎主要部位的确认 | 第21-22页 |
| 1.3.3 SMLE的提取 | 第22页 |
| 1.3.4 SMLE总酮含量测定 | 第22-23页 |
| 1.3.5 SMLE中丹参酮ⅡA,隐丹参酮,丹参酮Ⅰ,二氢丹参酮Ⅰ含量 | 第23-28页 |
| 1.4 讨论 | 第28-29页 |
| 第二部分 SMLE对体外NO产生的影响 | 第29-44页 |
| 2.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第29页 |
| 2.1.2 实验试剂及配制 | 第29-30页 |
| 2.1.3 细胞株 | 第30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 SMLE对RAW264.7细胞24 h细胞毒作用 | 第30-31页 |
| 2.2.2 NaNO_2标准曲线的绘制 | 第31页 |
| 2.2.3 SMLE和混合物对LPS诱导的RAW264.7细胞释放NO的剂量依赖作用 | 第31-32页 |
| 2.2.4 SMLE对LPS诱导的RAW 264.7细胞释放NO的时间依赖作用 | 第32页 |
| 2.2.5 SMLE对硝普钠释放NO自由基的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.6 SMLE对LPS诱导的iNOS活性的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.7 统计学分析 | 第34页 |
| 2.3 结果 | 第34-42页 |
| 2.3.1 SMLE对RAW264.7细胞24 h细胞毒作用 | 第34-35页 |
| 2.3.2 NaNO_2标准曲线的绘制 | 第35页 |
| 2.3.3 SMLE和混合物对LPS诱导的RAW264.7细胞释放NO的剂量依赖作用 | 第35-37页 |
| 2.3.4 SMLE对LPS诱导的RAW264.7细胞释放NO的时间依赖作用 | 第37-39页 |
| 2.3.5 SMLE硝普钠释放NO自由基的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.6 SMLE对iNOS活性影响 | 第40-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-44页 |
| 第三部分 SMLE对LPS诱导的RAW264.7细胞产生细胞因子的影响 | 第44-51页 |
| 3.1 实验材料 | 第44-45页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第44页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第44页 |
| 3.1.3 细胞株 | 第44-45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 3.2.1 IL-1β、IL-6、TNF-α的检测 | 第45-47页 |
| 3.2.2 统计学分析 | 第47页 |
| 3.3 结果与分析 | 第47-50页 |
| 3.3.1 IL-1β、IL-6、TNF-α标准曲线的制作 | 第47-48页 |
| 3.3.2 SMLE对细胞分泌IL-1β、IL-6、TNF-α的影响 | 第48-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50页 |
| 参考文献 | 第50-51页 |
| 第四部分 从核酸水平研究SMLE对iNOS及炎症因子基因表达的影响 | 第51-59页 |
| 4.1 实验材料 | 第51页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第51页 |
| 4.1.2 实验试剂及耗材 | 第51页 |
| 4.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 4.2.1 细胞培养及药物作用 | 第51-52页 |
| 4.2.2 RNA的提取 | 第52-53页 |
| 4.2.3 RNA的反转录 | 第53页 |
| 4.2.4 实时定量聚合酶链反应(Real-time PCR) | 第53-54页 |
| 4.2.5 统计学分析 | 第54页 |
| 4.3 结果与分析 | 第54-57页 |
| 4.4 讨论 | 第57-59页 |
| 第五部分 从胞内蛋白水平研究SMLE对iNOS表达及NF-κB通路的影响 | 第59-71页 |
| 5.1 实验材料 | 第59-61页 |
| 5.1.1 仪器 | 第59页 |
| 5.1.2 实验试剂与耗材 | 第59-60页 |
| 5.1.3 实验溶液的配制 | 第60-61页 |
| 5.2 实验方法 | 第61-65页 |
| 5.2.1 目的蛋白的选择 | 第61页 |
| 5.2.2 蛋白提取 | 第61-63页 |
| 5.2.3 蛋白浓度测定 | 第63页 |
| 5.2.4 免疫蛋白印迹分析(Western Blotting) | 第63-65页 |
| 5.2.5 统计分析 | 第65页 |
| 5.3 结果与分析 | 第65-69页 |
| 5.3.1 SMLE对NOS蛋白表达的影响 | 第65-66页 |
| 5.3.2 SMLE对LPS诱导的RAW264.7细胞IκB-α降解和p65核转位的作用 | 第66-69页 |
| 5.4 讨论 | 第69页 |
| 参考文献 | 第69-71页 |
| 第六部分:SMLE对细胞内ROS水平和GSH水平的影响 | 第71-77页 |
| 6.1 SMLE对LPS刺激RAW 264.7细胞内ROS水平的影响 | 第71-73页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第71页 |
| 6.1.2 实验方法 | 第71-72页 |
| 6.1.3 实验结果 | 第72-73页 |
| 6.2 SMLE对LPS刺激RAW 264.7细胞GSH水平的影响 | 第73-76页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第73-74页 |
| 6.2.2 实验方法 | 第74页 |
| 6.2.3 实验结果 | 第74-75页 |
| 6.2.4 讨论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-77页 |
| 第七部分 SMLE对细胞膜表面CD-14、TLR-4蛋白表达水平的影响 | 第77-84页 |
| 7.1 实验材料 | 第77页 |
| 7.1.1 实验仪器 | 第77页 |
| 7.1.2 实验试剂与耗材 | 第77页 |
| 7.2 实验方法 | 第77-79页 |
| 7.3 实验结果 | 第79-80页 |
| 7.3.1 SMLE对LPS诱导后CD14表达的影响 | 第79页 |
| 7.3.2 SMLE对LPS受体TLR4/MD-2复合物表达的影响 | 第79-80页 |
| 7.4 讨论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-84页 |
| 第八部分 SMLE对动物全身与局部炎症模型的影响 | 第84-91页 |
| 8.1 SMLE对LPS导致动物内毒素血症的死亡保护作用 | 第84-86页 |
| 8.1.1 实验材料 | 第84页 |
| 8.1.2 实验方法 | 第84页 |
| 8.1.3 实验结果 | 第84-86页 |
| 8.2 SMLE对动物盲肠结扎导致脓毒血症的死亡保护作用 | 第86-87页 |
| 8.2.1 实验材料 | 第86页 |
| 8.2.2 实验方法 | 第86页 |
| 8.2.3 实验结果 | 第86-87页 |
| 8.3 不同给药途径SMLE对耳肿胀动物的抗炎作用 | 第87-90页 |
| 8.3.1 实验材料 | 第87页 |
| 8.3.2 实验方法 | 第87-88页 |
| 8.3.3 实验结果 | 第88-89页 |
| 8.3.4 讨论 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-91页 |
| 讨论 | 第91-93页 |
| 参考文献 | 第93-97页 |
| 结论 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 公开发表的学术论文、专著及参加的科研项目 | 第99页 |
| 参加的科研项目 | 第99-100页 |
