| 致谢 | 第7-11页 |
| 摘要 | 第11-14页 |
| ABSTRACT | 第14-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-36页 |
| 1.1 铝对植物的毒害效应 | 第18-24页 |
| 1.1.1 酸性土壤和铝毒 | 第18-19页 |
| 1.1.2 铝对植物生长的影响 | 第19-20页 |
| 1.1.3 铝在植物体内的吸收与分布 | 第20-21页 |
| 1.1.4 铝对植物光合作用的影响 | 第21页 |
| 1.1.5 铝对植物ATP酶活性的影响 | 第21-22页 |
| 1.1.6 铝对植物氧化系统的影响 | 第22页 |
| 1.1.7 铝对植物矿质元素代谢的影响 | 第22-24页 |
| 1.2 植物适应铝胁迫的生理机制 | 第24-27页 |
| 1.2.1 外部排斥机制 | 第24-26页 |
| 1.2.2 内部忍耐机制 | 第26-27页 |
| 1.3 植物耐铝性的研究方法与进展 | 第27-33页 |
| 1.3.1 植物耐铝性的筛选鉴定方法 | 第27-28页 |
| 1.3.2 耐铝基因的研究与发掘 | 第28-30页 |
| 1.3.3 蛋白质组学在研究植物耐铝毒上的应用 | 第30-31页 |
| 1.3.4 基因芯片在研究植物耐铝毒上的应用 | 第31-32页 |
| 1.3.5 大麦耐铝机制研究 | 第32-33页 |
| 1.4 西藏野生大麦耐铝毒资源的开发与利用 | 第33-34页 |
| 1.5 本研究的目的意义 | 第34-36页 |
| 第二章 西藏野生大麦耐铝性鉴定和耐性基因型筛选 | 第36-48页 |
| 2.1 材料和方法 | 第36-38页 |
| 2.1.1 大麦材料 | 第36-37页 |
| 2.1.2 植株培养与试验设计 | 第37-38页 |
| 2.1.3 统计分析 | 第38页 |
| 2.2 结果与分析 | 第38-44页 |
| 2.2.1 离心管中水培铝处理筛选 | 第38-41页 |
| 2.2.2 基于发芽盒-滤纸-高浓度铝胁迫的耐铝性筛选 | 第41-44页 |
| 2.2.3 长时间水培铝胁迫下筛选结果 | 第44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-48页 |
| 第三章 铝胁迫对西藏野生大麦光合特性及铝吸收与分布的影响及基因型差异 | 第48-57页 |
| 3.1 材料与方法 | 第49-50页 |
| 3.1.1 植株培养与试验设计 | 第49页 |
| 3.1.2 分析测定方法 | 第49-50页 |
| 3.1.3 统计分析 | 第50页 |
| 3.2 结果与分析 | 第50-54页 |
| 3.2.1 铝胁迫对野生大麦幼苗生长的影响及基因型差异 | 第50-51页 |
| 3.2.2 铝胁迫对野生大麦幼苗光合与荧光参数的影响及基因型差异 | 第51-52页 |
| 3.2.3 铝胁迫下野生大麦幼苗铝含量的基因型差异 | 第52-53页 |
| 3.2.4 铝胁迫下大麦幼苗根尖铝荧光定位及基因型差异 | 第53-54页 |
| 3.3 讨论 | 第54-57页 |
| 第四章 铝胁迫对西藏野生大麦矿质元素含量、ATP酶活性及抗氧化系统的影响 | 第57-71页 |
| 4.1 材料与方法 | 第58-59页 |
| 4.1.1 幼苗培养与试验设计 | 第58-59页 |
| 4.1.2 分析测定方法 | 第59页 |
| 4.1.3 统计分析 | 第59页 |
| 4.2 结果分析 | 第59-67页 |
| 4.2.1 铝胁迫对野生大麦矿质元素含量的影响及基因型差异 | 第59-61页 |
| 4.2.2 铝胁迫对野生大麦ATP酶活性的影响及基因型差异 | 第61-64页 |
| 4.2.3 铝胁迫对野生大麦SOD、POD、CAT和APX活性的影响及基因型差异 | 第64-67页 |
| 4.3 讨论 | 第67-71页 |
| 第五章 铝胁迫及外源柠檬酸对西藏野生大麦根系有机酸分泌的影响及基因型差异 | 第71-87页 |
| 5.1 材料与方法 | 第72-73页 |
| 5.1.1 植株培养与试验设计 | 第72页 |
| 5.1.2 分析测定方法 | 第72-73页 |
| 5.2 结果与分析 | 第73-85页 |
| 5.2.1 铝胁迫对根系有机酸分泌的影响 | 第73-74页 |
| 5.2.2 外源NIF、A9C、CHM对铝胁迫下根系有机酸分泌的影响 | 第74-76页 |
| 5.2.3 根系柠檬酸分泌与ATP酶活性的相关性 | 第76-77页 |
| 5.2.4 外源柠檬酸对铝胁迫下大麦生长与生理的影响 | 第77-85页 |
| 5.3 讨论 | 第85-87页 |
| 第六章 铝胁迫对西藏野生大麦蛋白表达谱的影响及基因型差异 | 第87-111页 |
| 6.1 材料与方法 | 第87-91页 |
| 6.1.1 试验设计 | 第87-88页 |
| 6.1.2 蛋白检测 | 第88-90页 |
| 6.1.3 实时定量 PCR (quantitative real time PCR, qRT-PCR)验证部分差异表达基因 | 第90-91页 |
| 6.2 结果与分析 | 第91-103页 |
| 6.2.1 蛋白双向电泳结果分析 | 第91-96页 |
| 6.2.2 铝胁迫下部分上调表达蛋白的qRT-PCR分析 | 第96-101页 |
| 6.2.3 低pH条件下差异表达蛋白点的比对及部分差异点的质谱鉴定 | 第101-103页 |
| 6.3 讨论 | 第103-111页 |
| 第七章 铝胁迫对西藏野生大麦基因转录谱的影响及基因型差异 | 第111-133页 |
| 7.1 材料与方法 | 第111-116页 |
| 7.1.1 试验设计 | 第111-112页 |
| 7.1.2 芯片检测 | 第112-116页 |
| 7.1.3 RT-PCR验证部分差异表达基因 | 第116页 |
| 7.2 结果与分析 | 第116-126页 |
| 7.2.1 铝胁迫诱导部分上调表达基因的RT-PCR分析 | 第116-119页 |
| 7.2.2 铝胁迫下大麦根系基因转录水平的基因型差异 | 第119-122页 |
| 7.2.3 铝胁迫下不同铝耐性基因型大麦差异表达基因功能分析 | 第122-126页 |
| 7.3 讨论 | 第126-133页 |
| 第八章 磷营养对铝胁迫西藏野生大麦生长与生理的影响及基因型差异 | 第133-151页 |
| 8.1 材料与方法 | 第134-135页 |
| 8.1.1 试验设计 | 第134页 |
| 8.1.2 分析测定方法 | 第134-135页 |
| 8.1.3 统计分析 | 第135页 |
| 8.2 结果与分析 | 第135-148页 |
| 8.2.1 不同浓度磷对铝胁迫下大麦SPAD及生物量的影响及基因型差异 | 第135-137页 |
| 8.2.2 不同浓度磷对铝胁迫下大麦荧光参数的影响及基因型差异 | 第137页 |
| 8.2.3 不同浓度磷对铝胁迫下大麦光合作用的影响及基因型差异 | 第137-138页 |
| 8.2.4 不同浓度磷对铝胁迫下大麦抗氧化系统的影响及基因型差异 | 第138-140页 |
| 8.2.5 不同浓度磷对铝胁迫下大麦大麦膜脂过氧化的影响及基因型差异 | 第140页 |
| 8.2.6 不同浓度磷对铝胁迫下大麦ATP酶活性的影响及基因型差异 | 第140-142页 |
| 8.2.7 不同浓度磷对铝胁迫下大麦铝含量的影响及基因型差异 | 第142-143页 |
| 8.2.8 不同浓度磷对铝胁迫下大麦根尖铝荧光定位的影响及基因型差异 | 第143-144页 |
| 8.2.9 不同浓度磷对铝胁迫下大麦有机酸分泌的影响及基因型差异 | 第144页 |
| 8.2.10 不同浓度磷对铝胁迫下大麦矿质元素含量的影响及基因型差异 | 第144-148页 |
| 8.3 讨论 | 第148-151页 |
| 第九章 全文总结与展望 | 第151-153页 |
| 参考文献 | 第153-177页 |
| 附录 | 第177-208页 |
| 附表1 基因芯片耐铝相关基因荧光定量PCR验证基因表达序列表 | 第177-178页 |
| 附表2 基因芯片耐铝相关基因表达量序列表 | 第178-208页 |
| 缩略词表 | 第208-210页 |
| 图目录 | 第210-211页 |
| 表目录 | 第211-212页 |
| 博士期间发表或已投稿的文章 | 第212页 |
