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以线虫为模型研究中药中活性成份的生物学功能及中药紫苏梗降糖功能的研究

摘要第4-8页
ABSTRACT第8-11页
第一篇 以线虫为模型研究中药中活性成份的生物学功能及中药紫苏梗降糖功能的研究第19-82页
    英文缩略词第19-20页
    第一章 前言第20-34页
        1.1 中药简介第20-25页
            1.1.1 三七总皂甙第20页
            1.1.2 甜菜碱第20-21页
            1.1.3 瑞香素第21页
            1.1.4 石斛第21-22页
            1.1.5 人参多糖第22-24页
            1.1.6 松籽油微囊粉第24页
            1.1.7 “螃蟹脚”第24-25页
        1.2 紫外辐射第25-26页
        1.3 什么是线虫第26-33页
            1.3.1 线虫的自然史第26-31页
            1.3.2 为什么线虫是一个优秀的模式生物第31-33页
        1.4 立题依据第33-34页
    第二章 实验材料与线虫的培养方法第34-38页
        2.1 材料试剂与溶液第34-35页
            2.1.1 虫株第34页
            2.1.2 菌株第34页
            2.1.3 实验试剂第34页
            2.1.4 缓冲液及培养基第34-35页
        2.2 仪器第35-36页
        2.3 线虫的一般培养第36-38页
            2.3.1 线虫生长培养基(NGM)的准备第36页
            2.3.2 大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第36页
            2.3.3 线虫的培养第36-37页
            2.3.4 线虫的同期化培养第37页
            2.3.5 线虫的保存方法第37-38页
    第三章 中药活性成份对线虫寿命的影响第38-56页
        3.1 石斛水溶性成份对线虫寿命的影响第38-40页
            3.1.1 石斛水溶性成份的制备第38页
            3.1.2 浓度设置第38页
            3.1.3 给药方式与给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第38页
            3.1.4 寿命观测第38-39页
            3.1.5 实验结果的统计方法第39页
            3.1.6 实验结果第39-40页
        3.2 螃蟹脚提物对线虫寿命的影响第40-42页
            3.2.1 螃蟹脚水溶性成份的制备第40-41页
            3.2.2 梯度设置第41页
            3.2.3 给药方式与给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第41页
            3.2.4 寿命观测第41页
            3.2.5 实验结果的统计方法第41页
            3.2.6 实验结果第41-42页
        3.3 三七总皂苷对线虫寿命的影响第42-45页
            3.3.1 三七总皂苷贮液的准备第42-43页
            3.3.2 给药组线虫生长培养基的准备第43页
            3.3.3 给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第43页
            3.3.4 寿命观测第43页
            3.3.5 实验结果的统计方法第43页
            3.3.6 实验结果第43-45页
        3.4 甜菜碱对线虫寿命的影响第45-48页
            3.4.1 甜菜碱贮液的制备第45页
            3.4.2 给药组线虫生长培养基的准备第45页
            3.4.3 给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第45页
            3.4.4 寿命观测第45-46页
            3.4.5 实验结果的统计方法第46页
            3.4.6 实验结果第46-48页
        3.5 人参多糖对线虫寿命的影响第48-51页
            3.5.1 人参多糖贮液的准备第48-49页
            3.5.2 给药组线虫生长培养基的准备第49页
            3.5.3 给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第49页
            3.5.4 寿命观测第49页
            3.5.5 实验结果的统计方法第49页
            3.5.6 实验结果第49-51页
        3.6 瑞香素对线虫寿命的影响第51-54页
            3.6.1 瑞香素贮液的准备第51页
            3.6.2 给药组线虫生长培养基的准备第51页
            3.6.3 给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第51页
            3.6.4 寿命观测第51-52页
            3.6.5 实验结果的统计方法第52页
            3.6.6 实验结果第52-54页
        3.6 小结第54-56页
    第四章 瑞香素对线虫生物学功能的影响第56-62页
        4.1 瑞香素的对于线虫寿命的影响第56-60页
            4.1.1 瑞香素贮液的准备第56页
            4.1.2 给药组线虫生长培养基的准备第56页
            4.1.3 给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第56页
            4.1.4 寿命观测第56-57页
            4.1.5 实验结果的统计方法第57页
            4.1.6 实验结果第57-60页
        4.2 瑞香素的异常发育作用第60页
        4.3 小结第60-62页
    第五章 松籽油微囊粉的抗紫外辐射作用的研究第62-76页
        5.1 松籽油微囊粉对线虫寿命的影响及作用机制第62-66页
            5.1.1 松籽油微囊粉贮液的准备第62页
            5.1.2 给药组线虫生长培养基的准备第62页
            5.1.3 给药组大肠杆菌 E.coli OP50 的涂布第62页
            5.1.4 寿命观测第62-63页
            5.1.5 实验结果的统计方法第63页
            5.1.6 实验结果第63-66页
        5.2 松籽油微囊粉抗紫外辐射测定第66-74页
            5.2.1 统计学处理第67-68页
            5.2.2 实验结果第68-74页
        5.3 小结第74-76页
    第六章 讨论与结论第76-82页
        6.1 讨论第76-80页
        6.2 结论第80-82页
第二篇 中药紫苏梗降糖效果的研究第82-118页
    缩写词表第82-84页
    第1章 文献综述第84-96页
        1.1 蛋白质酪氨酸磷酸酶(PTPS)第84页
        1.2 PTPS 的分类第84-86页
        1.3 SHP-1 的活性调节及分子结构第86-88页
        1.4 SHP-1 的生理功能及相关疾病第88-89页
        1.5 糖尿病的现状第89-91页
        1.6 中药在治疗糖尿病中的应用第91-94页
        1.7 本论文的研究目的与意义第94-96页
    第2章 蛋白质酪氨酸磷酸酶 SHP-1 抑制剂的筛选第96-104页
        2.1 实验用品第96-97页
            2.1.1 实验试剂及材料第96页
            2.1.2 实验仪器第96页
            2.1.3 实验菌种第96-97页
        2.2 实验方法第97-99页
            2.2.1 试剂的配制第97页
            2.2.2 SHP-1 抑制剂的筛选第97-98页
            2.2.3 紫苏梗水提液对 PTPs 的专一性第98-99页
            2.2.4 紫苏梗对 SHP-1 的抑制类型第99页
            2.2.5 数据统计第99页
        2.3 实验结果第99-102页
            2.3.1 SHP-1 抑制剂的筛选第99-102页
            2.3.3 紫苏梗对 SHP-1 的酶促反应动力学分析第102页
        2.4 本章小结第102-104页
    第3章 紫苏梗水提液降糖机理的研究第104-112页
        3.1 实验用品第106-107页
            3.1.1 实验试剂及材料第106-107页
            3.1.2 实验仪器第107页
        3.2 实验方法第107-109页
            3.2.1 试剂的配制第107页
            3.2.2 紫苏梗水提液刺激 HepG2 细胞第107-108页
            3.2.3 Western blot 检测紫苏梗水提液对 HepG2 细胞蛋白磷酸化水平的影响第108-109页
        3.3 实验结果第109-111页
            3.3.1 紫苏梗对 HepG2 细胞蛋白磷酸化水平的影响第109页
            3.3.2 紫苏梗水提液对 HepG2 细胞中全蛋白的磷酸化水平的影响第109-111页
        3.4 本章小结第111-112页
    第4章 紫苏梗对 STZ 诱导的 2 型糖尿病小鼠的降糖作用第112-118页
        4.1 实验用品第112页
            4.1.1 实验试剂第112页
            4.1.2 实验仪器第112页
            4.1.3 实验动物第112页
        4.2 实验方法第112-114页
            4.2.1 药物与试剂的配制第112-113页
            4.2.2 糖尿病小鼠模型的建立第113页
            4.2.3 体重及血糖的检测第113页
            4.2.4 实验分组第113-114页
            4.2.5 对小鼠灌胃给药方案第114页
            4.2.6 检测血糖变化第114页
            4.2.7 数据统计第114页
        4.3 实验结果与讨论第114-117页
            4.3.1 STZ 诱导的 2 型糖尿病小鼠模型的建立第114-116页
            4.3.2 紫苏梗水提液对 STZ 诱导的 2 型糖尿病小鼠血糖的影响第116-117页
        4.4 本章小结第117-118页
参考文献第118-130页
攻读博士期间发表的论文科研成果第130-132页
致谢第132页

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