| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-29页 |
| 1.1 MS概述 | 第15-16页 |
| 1.2 BMP与轴突再生的关系 | 第16-19页 |
| 1.3 小胶质细胞在MS/EAE中的作用 | 第19-21页 |
| 1.4 胍丁胺的概述 | 第21-26页 |
| 1.4.1 胍丁胺的生物合成与分布 | 第22页 |
| 1.4.2 胍丁胺的生物学功能及应用 | 第22-23页 |
| 1.4.3 胍丁胺的抗伤害感受 | 第23页 |
| 1.4.4 胍丁胺对脑缺血动物模型的影响 | 第23-24页 |
| 1.4.5 胍丁胺与退行性病变 | 第24-25页 |
| 1.4.6 胍丁胺与脊髓损伤 | 第25页 |
| 1.4.7 胍丁胺与抑郁症和癫痫 | 第25-26页 |
| 1.5 小结 | 第26-29页 |
| 第2章 胍丁胺对体外培养神经元保护作用的实验研究 | 第29-49页 |
| 2.1 前言 | 第29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-39页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第29-31页 |
| 2.2.2 主要试剂配制 | 第31-39页 |
| 2.3 实验结果 | 第39-46页 |
| 2.3.1 小鼠星型胶质细胞培养体系的建立 | 第39-40页 |
| 2.3.2 小鼠星型胶质细胞的鉴定 | 第40-41页 |
| 2.3.3 小鼠皮层神经元的培养体系的建立 | 第41-42页 |
| 2.3.4 小鼠皮层神经元的鉴定 | 第42-43页 |
| 2.3.5 小鼠皮层神经元中GFAP的鉴定 | 第43页 |
| 2.3.6 神经元生长曲线的测定 | 第43-44页 |
| 2.3.7 选择谷氨酸损伤的浓度 | 第44页 |
| 2.3.8 不同浓度胍丁胺对神经元的作用 | 第44-45页 |
| 2.3.9 神经元和星型胶质细胞用胍丁氨刺激后BMP2、4、7 的含量 | 第45-46页 |
| 2.3.10 胍丁胺对谷氨酸损伤的星型胶质细胞与神经元共培养体系的影响 | 第46页 |
| 2.4 讨论 | 第46-48页 |
| 2.5 结论 | 第48-49页 |
| 第3章 EAE模型的制备及胍丁胺的治疗 | 第49-59页 |
| 3.1 前言 | 第49页 |
| 3.2 材料与方法 | 第49-53页 |
| 3.2.1 EAE模型的建立 | 第49-53页 |
| 3.2.2 数据处理及分析 | 第53页 |
| 3.3 实验结果 | 第53-56页 |
| 3.3.1 EAE的诱导 | 第53-54页 |
| 3.3.2 胍丁胺的治疗 | 第54-55页 |
| 3.3.3 脊髓内BMP的表达 | 第55-56页 |
| 3.4 讨论 | 第56-57页 |
| 3.4.1 EAE的诱导 | 第56页 |
| 3.4.2 胍丁胺的治疗 | 第56-57页 |
| 3.5 结论 | 第57-59页 |
| 第４章 胍丁胺治疗EAE后脊髓内相关变化 | 第59-83页 |
| 4.1 前言 | 第59页 |
| 4.2 材料与方法 | 第59-71页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第59-66页 |
| 4.2.2 实验方法及步骤 | 第66-71页 |
| 4.2.3 实验数据处理 | 第71页 |
| 4.3 实验结果 | 第71-80页 |
| 4.3.1 脊髓内BMP的q PCR结果 | 第71-72页 |
| 4.3.2 脊髓内相关蛋白的表达 | 第72-77页 |
| 4.3.3 脊髓内细胞的免疫荧光染色 | 第77-80页 |
| 4.4 讨论 | 第80-83页 |
| 第5章 结论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-99页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101页 |