| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词 | 第10-11页 |
| 第一章 系水力研究概况 | 第11-21页 |
| 1 系水力的定义及形成机制 | 第11-13页 |
| 1.1 系水力的定义 | 第11-12页 |
| 1.2 系水力的形成机制 | 第12-13页 |
| 2 系水力的影响因素 | 第13-18页 |
| 2.1 肌肉中静电荷和肌肉收缩对系水力的影响 | 第13-14页 |
| 2.2 细胞骨架蛋白降解对系水力的影响 | 第14-16页 |
| 2.3 遗传因素对系水力的影响 | 第16-17页 |
| 2.4 营养及环境因素对系水力的影响 | 第17-18页 |
| 3 系水力的测定 | 第18-21页 |
| 3.1 压力法 | 第18页 |
| 3.2 滴水损失法 | 第18-19页 |
| 3.3 烹饪损失法 | 第19页 |
| 3.4 近红外光谱法 | 第19-21页 |
| 第二章 本文研究的骨架蛋白相关基因概述 | 第21-25页 |
| 1 RHOA | 第21-22页 |
| 2 UBXN1 | 第22-25页 |
| 第三章 Rho与UBXN1基因多态性筛选及与系水力的关联分析 | 第25-41页 |
| 1 实验材料 | 第25-27页 |
| 1.1 实验动物及样品采集 | 第25页 |
| 1.2 实验试剂 | 第25-26页 |
| 1.3 DNA提取组织裂解液的配制 | 第26页 |
| 1.4 主要仪器及实验器械 | 第26-27页 |
| 1.5 网络资源与生物信息学软件 | 第27页 |
| 2 方法 | 第27-33页 |
| 2.1 系水力测定 | 第27页 |
| 2.2 RNA提取 | 第27-28页 |
| 2.3 反转录为cDNA | 第28页 |
| 2.4 荧光实时定量PCR (real time quantitative PCR) | 第28-29页 |
| 2.5 肌肉DNA的提取 | 第29-30页 |
| 2.6 DNA浓度测定和DNA样品混池 | 第30页 |
| 2.7 引物设计及PCR扩增 | 第30-31页 |
| 2.8 PCR反应体系和程序 | 第31-33页 |
| 2.9 PCR-SSCP | 第33页 |
| 3 结果 | 第33-37页 |
| 3.1 UBXN1基因表达量与系水力的相关性 | 第33-34页 |
| 3.2 RhoA基因表达量与系水力的相关性 | 第34-35页 |
| 3.3 UBXN1基因启动子区SNP位点的筛选 | 第35-36页 |
| 3.4 RhoA基因启动子区SNP位点的筛选 | 第36页 |
| 3.5 SNP位点基因分型 | 第36页 |
| 3.6 SNP位点与猪系水力相关性 | 第36-37页 |
| 3.7 不同基因型个体中UBXN1的表达 | 第37页 |
| 4 讨论 | 第37-41页 |
| 第四章 UBXN1基因调控区SNP位点对启动子活性的影响 | 第41-53页 |
| 1 实验材料 | 第41-42页 |
| 1.1 实验样品 | 第41页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第41页 |
| 1.3 主要仪器及实验器械 | 第41-42页 |
| 1.4 数据库与生物软件 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42-47页 |
| 2.1 构建pGL3-GG/TT两种双荧光素酶报告载体 | 第42-46页 |
| 2.2 双荧光素酶报告载体的启动子活性分析 | 第46-47页 |
| 3 结果 | 第47-51页 |
| 3.1 菌液PCR鉴定构建载体 | 第47-48页 |
| 3.2 双酶切鉴定构建载体 | 第48-49页 |
| 3.3 测序验证突变重组载体 | 第49-50页 |
| 3.4 UBXN1不同基因型启动子活性分析 | 第50页 |
| 3.5 转录因子结合位点预测 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| 全文结论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
