| 前言 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第12-16页 |
| 第1章 文献综述 | 第16-22页 |
| 1.1 肿瘤间质 | 第16-19页 |
| 1.1.1 肿瘤血管 | 第16-17页 |
| 1.1.1.1 肿瘤血管结构及其功能 | 第16页 |
| 1.1.1.2 抗血管生成治疗及其进展 | 第16-17页 |
| 1.1.2 基质金属蛋白酶（MMPs） | 第17-19页 |
| 1.1.2.1 MMPs结构与功能 | 第17-18页 |
| 1.1.2.2 MMPs抑制剂及其研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2 杨梅黄酮 | 第19-22页 |
| 1.2.1 杨梅黄酮抗肿瘤作用 | 第19-20页 |
| 1.2.2 杨梅黄酮其他生物学作用 | 第20-22页 |
| 第2章 材料和方法 | 第22-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第23页 |
| 2.1.3 实验药品 | 第23页 |
| 2.1.4 实验细胞株 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-32页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第24页 |
| 2.2.2 CCK-8 实验 | 第24页 |
| 2.2.3 细胞周期流式检测 | 第24-25页 |
| 2.2.4 Western-blot实验检测细胞周期蛋白 | 第25-26页 |
| 2.2.5 Hoechst 33342 染色观察凋亡细胞形态 | 第26-27页 |
| 2.2.6 细胞凋亡流式检测 | 第27-28页 |
| 2.2.7 细胞迁移实验（划痕法） | 第28页 |
| 2.2.8 细胞迁移实验（Transwell法） | 第28页 |
| 2.2.9 细胞侵袭实验（Transwell法） | 第28-29页 |
| 2.2.10 RT-PCR检测 | 第29-31页 |
| 2.2.11 成管实验 | 第31-32页 |
| 2.3 统计学方法 | 第32-33页 |
| 第3章 结果 | 第33-51页 |
| 3.1 杨梅黄酮对胶质瘤细胞增殖及凋亡的影响 | 第33-41页 |
| 3.1.1 CCK-8 实验检测杨梅黄酮对胶质瘤细胞活性的影响 | 第33-34页 |
| 3.1.2 杨梅黄酮对胶质瘤细胞增殖的影响 | 第34-37页 |
| 3.1.3 杨梅黄酮对胶质瘤细胞凋亡的影响 | 第37-41页 |
| 3.2 杨梅黄酮对胶质瘤细胞迁移及侵袭的影响 | 第41-48页 |
| 3.2.1 Transwell实验检测杨梅黄酮对胶质瘤细胞迁移的影响 | 第41-43页 |
| 3.2.2 Transwell实验检测杨梅黄酮对胶质瘤细胞侵袭的影响 | 第43-45页 |
| 3.2.3 RT-PCR检测胶质瘤细胞MMPs m RNA的水平 | 第45-48页 |
| 3.3 杨梅黄酮对HUVEC体外成管的影响 | 第48-51页 |
| 3.3.1 杨梅黄酮对HUVEC增殖的作用 | 第48页 |
| 3.3.2 杨梅黄酮对HUVEC迁移的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.3 成管实验检测杨梅黄酮对U251细胞诱导的HUVEC成管的影响 | 第49-51页 |
| 第4章 讨论 | 第51-56页 |
| 4.1 杨梅黄酮通过抑制增殖和促进凋亡抑制脑胶质瘤细胞的生长 | 第51-53页 |
| 4.2 杨梅黄酮通过降低MMPS的表达抑制胶质瘤细胞的迁移及侵袭 | 第53-54页 |
| 4.3 杨梅黄酮可抑制血管内皮细胞的增殖和迁移及体外成管 | 第54-56页 |
| 第5章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
