摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6页 |
第1章 文献综述 | 第11-31页 |
1.1 点击化学的定义 | 第11页 |
1.2 点击化学的应用 | 第11-16页 |
1.2.1 点击化学在生物方面的应用 | 第11-12页 |
1.2.2 点击化学在材料方面的应用 | 第12-14页 |
1.2.3 点击化学在无机化学方面的应用 | 第14-15页 |
1.2.4 点击化学在化学合成方面的应用 | 第15-16页 |
1.3 关于点击化学(CuAAC)的研究进展 | 第16-22页 |
1.3.1 点击化学(CuAAC)的简介 | 第16-17页 |
1.3.2 CuAAC的催化体系 | 第17-20页 |
1.3.3 CuAAC的反应机理研究 | 第20-21页 |
1.3.4 CuAAC的反应类型研究 | 第21-22页 |
1.4 配合物切割DNA活性及机理的研究进展 | 第22-29页 |
1.4.1 金属配合物和DNA的作用机理 | 第24页 |
1.4.2 铜配合物的水解机理 | 第24-25页 |
1.4.3 铜配合物的氧化切割机理 | 第25-26页 |
1.4.4 铜配合物的光反应切割机理 | 第26页 |
1.4.5 铜配合物的结构对DNA切割活性的影响 | 第26-29页 |
1.5 课题的提出 | 第29-30页 |
1.6 课题创新点 | 第30-31页 |
第2章 吡啶-1,2,3-三唑衍生物配体设计合成 | 第31-49页 |
2.1 配体的设计 | 第31-32页 |
2.2 合成路线的设计 | 第32-37页 |
2.2.1 硝基化合物的合成路线的设计 | 第34-35页 |
2.2.2 2-(苯基乙炔)-吡啶的合成路线的设计 | 第35页 |
2.2.3 吡啶-NH-1,2,3-三唑的合成路线 | 第35-36页 |
2.2.4 N-取代-1,2,3-三唑衍生物配体的合成路线 | 第36-37页 |
2.3 实验部分 | 第37-43页 |
2.3.1 实验原料与实验试剂 | 第37-38页 |
2.3.2 主要实验仪器 | 第38页 |
2.3.3 硝基化合物的合成 | 第38页 |
2.3.4 吡啶-NH-1,2,3-三唑的合成 | 第38-39页 |
2.3.5 2-苯基乙炔-吡啶的合成 | 第39页 |
2.3.6 5-苯基-吡啶-1,2,3-三唑的合成 | 第39页 |
2.3.7 N-苄基取代-吡啶-1,2,3-三唑(L1和L2)的合成及表征 | 第39-40页 |
2.3.8 N-亚甲基吡啶-吡啶-1,2,3-三唑(L3和L4)的合成及表征 | 第40-41页 |
2.3.9 N-吡啶取代-吡啶-1,2,3-三唑(L5和L6)的合成及表征 | 第41-42页 |
2.3.10 5-苯基-苄基取代-吡啶-1,2,3-三唑(L7)的合成 | 第42页 |
2.3.11 5-苯基-苯基取代-吡啶-1,2,3-三唑(L8)的合成及表征 | 第42-43页 |
2.4 结果与讨论 | 第43-49页 |
第3章 1,2,3-三唑衍生物配体辅助Cu(Ⅰ)在Click反应中的应用 | 第49-57页 |
3.1 配体辅助Cu(Ⅰ)作为催化剂的条件优化 | 第49-54页 |
3.1.1 不同N-吡啶取代-1,2,3-三唑配体辅助Cu(Ⅰ)催化活性研究 | 第49-50页 |
3.1.2 不同的溶剂对配体L5催化剂体系的影响 | 第50-51页 |
3.1.3 不同种类的 1,2,3-三唑衍生物配体辅助Cu(Ⅰ)催化研究 | 第51-52页 |
3.1.4 同种 1,2,3-三唑衍生物配体辅助Cu(Ⅰ)在不同溶剂下催化研究 | 第52-53页 |
3.1.5 不同种类的配体辅助Cu(Ⅰ)盐催化三组分点击化学 | 第53-54页 |
3.2 1,4-二取代-1,2,3-三唑的合成与表征 | 第54-57页 |
3.2.1 1,4-二取代-1,2,3-三唑a的合成 | 第54-55页 |
3.2.2 1,4-二取代-1,2,3-三唑b的合成 | 第55页 |
3.2.3 1,4-二取代-1,2,3-三唑c的合成 | 第55-56页 |
3.2.4 1,4-二取代-1,2,3-三唑d的合成 | 第56-57页 |
第4章 1,2,3-三唑衍生物配体辅助CuI催化点击化学反应机理研究 | 第57-62页 |
4.1 CuI-L5复合物的合成及其催化活性研究 | 第57-58页 |
4.2 CuI-L5复合物晶体合成及结构研究 | 第58-62页 |
第5章 双核铜配合物的合成及其性质研究 | 第62-77页 |
5.1 配体及其配合物的合成路线 | 第62页 |
5.1.1 配体5-苯基-1,2,3-三唑4羧酸的合成 | 第62页 |
5.1.2 双核铜配合物1的合成路线 | 第62页 |
5.2 实验方法 | 第62-64页 |
5.2.1 试剂与原料 | 第62-63页 |
5.2.2 测试仪器及使用方法 | 第63页 |
5.2.3 配体 5-苯基-1H-1,2,3-三唑4羧酸的制备 | 第63-64页 |
5.2.4 双核铜配合物的制备 | 第64页 |
5.3 晶体结构及数据解析 | 第64-69页 |
5.4 配合物1荧光性质的测定 | 第69-71页 |
5.4.1 溶剂的配置和样品的准备 | 第69-70页 |
5.4.2 配体和配合物1的荧光测定 | 第70-71页 |
5.5 配合物1生物活性的测定 | 第71-74页 |
5.5.1 琼脂糖凝胶电泳检测配合物切割DNA的原理 | 第71-72页 |
5.5.2 实验方法 | 第72-73页 |
5.5.3 配合物1切割DNA的实验步骤 | 第73-74页 |
5.6 结果与讨论 | 第74-77页 |
5.6.1 配合物1对DNA的切割活性 | 第74-76页 |
5.6.2 双核铜配合物对DNA的切割机理的研究 | 第76-77页 |
第6章 总结 | 第77-80页 |
6.1 工作总结 | 第77-79页 |
6.2 展望 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-88页 |
攻读硕士期间已发表的文章 | 第88-89页 |
附录1 部分化合物~1H-NMR和~(13)C-NMR图谱 | 第89-99页 |
致谢 | 第99页 |