植物HGO基因功能的初步研究
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第10-16页 |
| 1 基因功能研究的模式植物 | 第10页 |
| 2 芳香族氨基酸降解代谢 | 第10-12页 |
| 3 芳香族氨基酸代谢障碍 | 第12-14页 |
| 3.1 动物代谢缺陷 | 第12-13页 |
| 3.2 植物代谢缺陷 | 第13-14页 |
| 4 植物基因功能的研究方法 | 第14-15页 |
| 4.1 基因功能的缺失 | 第14页 |
| 4.2 基因功能的增强 | 第14-15页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第15-16页 |
| 第二章 HGO基因突变对拟南芥幼苗生长的影响 | 第16-20页 |
| 1 材料与方法 | 第16-17页 |
| 1.1 植物材料与试剂 | 第16页 |
| 1.2 试验方法 | 第16-17页 |
| 1.2.1 试验样品处理 | 第16-17页 |
| 1.2.2 拟南芥幼苗培养 | 第17页 |
| 1.3 数据处理 | 第17页 |
| 2 结果与分析 | 第17-19页 |
| 2.1 HGO基因突变对拟南芥幼苗生长的影响 | 第17页 |
| 2.2 酪氨酸对拟南芥幼苗生长的影响 | 第17-19页 |
| 3 讨论 | 第19-20页 |
| 第三章 OsHGO基因的克隆及功能验证 | 第20-38页 |
| 1 材料与方法 | 第21-30页 |
| 1.1 供试植物 | 第21页 |
| 1.2 菌株与载体 | 第21页 |
| 1.3 试剂与仪器 | 第21-22页 |
| 1.4 试验方法 | 第22-30页 |
| 1.4.1 生物信息学分析 | 第22页 |
| 1.4.2 水稻总RNA提取 | 第22页 |
| 1.4.3 RNA反转录 | 第22-23页 |
| 1.4.4 OsHGO基因的CDS序列克隆 | 第23-24页 |
| 1.4.5 PCR产物的回收 | 第24-25页 |
| 1.4.6 OsHGO扩增片段酶切及回收 | 第25页 |
| 1.4.7 质粒pBI121的获得 | 第25页 |
| 1.4.8 质粒pBI121的酶切与回收 | 第25-26页 |
| 1.4.9 酶切产物的连接 | 第26页 |
| 1.4.10 大肠杆菌感受态的制备 | 第26页 |
| 1.4.11 大肠杆菌的热击转化法 | 第26页 |
| 1.4.12 大肠杆菌菌落PCR | 第26-27页 |
| 1.4.13 pBI-OsHGO重组质粒的获得 | 第27页 |
| 1.4.14 重组质粒的提取 | 第27-28页 |
| 1.4.15 农杆菌感受态制备 | 第28页 |
| 1.4.16 农杆菌的电击转化 | 第28页 |
| 1.4.17 质粒PCR检测 | 第28页 |
| 1.4.18 拟南芥幼苗的培养 | 第28-29页 |
| 1.4.19 农杆菌的培养 | 第29页 |
| 1.4.20 转化菌液的制备 | 第29页 |
| 1.4.21 农杆菌的拟南芥浸染转化 | 第29页 |
| 1.4.22 T1代拟南芥转化植株筛选 | 第29-30页 |
| 1.4.23 T1代抗性苗PCR检测 | 第30页 |
| 1.4.24 转化株纯合体筛选 | 第30页 |
| 1.4.25 OsHGO转基因植株表型观察 | 第30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-37页 |
| 2.1 OsHGO基因的生物信息学分析 | 第30-33页 |
| 2.1.1 同源比对及结构域分析 | 第30-32页 |
| 2.1.2 系统树的建立 | 第32-33页 |
| 2.2 OsHGO基因CDS序列的克隆 | 第33-34页 |
| 2.3 农杆菌转化子重组质粒的PCR检测 | 第34-35页 |
| 2.4 转基因植物的鉴定 | 第35-36页 |
| 2.5 转基因植株纯合子的筛选 | 第36页 |
| 2.6 转基因植物的表型观察 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-38页 |
| 第四章 水稻OsHGO基因的表达特征分析 | 第38-45页 |
| 1 材料 | 第38页 |
| 1.1 供试材料 | 第38页 |
| 1.1.1 供试植物 | 第38页 |
| 1.1.2 试剂与仪器 | 第38页 |
| 2 方法 | 第38-41页 |
| 2.1 引物设计 | 第38-39页 |
| 2.2 表达分析材料准备 | 第39-41页 |
| 2.2.1 组织表达分析 | 第39页 |
| 2.2.2 非生物胁迫表达分析 | 第39页 |
| 2.2.3 生物胁迫表达分析 | 第39页 |
| 2.2.4 光周期表达分析 | 第39-40页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR分析 | 第40-41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-43页 |
| 3.1 OsHGO基因组织特异性表达分析 | 第41页 |
| 3.2 OsHGO基因逆境胁迫下的表达分析 | 第41-42页 |
| 3.3 OsHGO基因光周期表达分析 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 4.1 OsHGO表达的组织特异性 | 第43页 |
| 4.2 逆境胁迫下OsHGO的表达特征 | 第43-44页 |
| 4.3 不同光周期对OsHGO表达的影响 | 第44-45页 |
| 第五章 结论与展望 | 第45-47页 |
| 1 本文的主要结论 | 第45页 |
| 2 本文的主要创新点 | 第45-46页 |
| 3 展望 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 附录：部分缩略词表 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 作者简介 | 第53页 |
| 教育经历 | 第53页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第53页 |
