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酮病奶牛血浆Leptin动态变化与脂肪Leptin及其受体转录水平的研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
符号说明第10-13页
第一章 文献综述第13-25页
    1.1 奶牛酮病第13-16页
        1.1.1 能量负平衡第13-14页
        1.1.2 奶牛酮病发病机制第14-16页
    1.2 瘦素及瘦素受体第16-22页
        1.2.1 瘦素第16-17页
        1.2.2 瘦素受体第17-18页
        1.2.3 瘦素信号转导第18-19页
        1.2.4 瘦素对摄食行为调控第19-20页
        1.2.5 瘦素与繁殖功能第20-21页
        1.2.6 瘦素与免疫第21-22页
    1.3 瘦素对脂肪代谢的调节第22-25页
        1.3.1 瘦素对脂肪合成与胰岛素激活的代谢过程的作用第23页
        1.3.2 瘦素对脂肪分解的作用第23-25页
第二章 围产期酮病奶牛血浆瘦素、胰岛素及酮体的动态变化第25-36页
    2.1 前言第25页
    2.2 材料与方法第25-28页
        2.2.1 实验动物第25-26页
        2.2.2 血浆样本的处理第26页
        2.2.3 生化指标的测定方法第26-27页
        2.2.4 主要仪器与试剂第27-28页
        2.2.5 数据分析与统计检验第28页
    2.3 结果第28-32页
        2.3.1 酮病牛与非酮病牛的两组比较第28页
        2.3.2 瘦素的动态变化结果第28-29页
        2.3.3 酮体动态变化结果第29页
        2.3.4 血糖的动态变化结果第29页
        2.3.5 游离脂肪酸的动态变化结果第29-32页
        2.3.6 胰岛素的动态变化结果第32页
    2.4 分析与讨论第32-36页
        2.4.1 瘦素在奶牛酮病中的作用第32-33页
        2.4.2 酮病牛的血糖、血脂代谢变化第33-34页
        2.4.3 酮病牛胰岛素与代谢调节第34-36页
第三章 体外添加β羟丁酸、瘦素、胰岛素对犊牛不同部位脂肪组织中瘦素及瘦素受体mRNA表达的影响第36-61页
    3.1 前言第36页
    3.2 材料与方法第36-40页
        3.2.1 实验材料第36-37页
        3.2.2 主要仪器第37-38页
        3.2.3 主要试剂第38页
        3.2.4 试剂的配制第38-40页
    3.3 实验方法第40-44页
        3.3.1 荧光定量PCR标准曲线的建立第40-43页
        3.3.2 犊牛脂肪组织块的分离与培养第43-44页
        3.3.3 脂肪样本总RNA的提取(见38页)第44页
        3.3.4 样本荧光定量PCR检测(见40页)第44页
        3.3.5 荧光定量2~(-△△Ct)相对定量法第44页
        3.3.6 数据分析与统计检验第44页
    3.4 结果第44-58页
        3.4.1 引物的特异性验证第44-45页
        3.4.2 肝脏及脂肪总RNA纯度及完整性鉴定第45-46页
        3.4.3 阳性克隆重组质粒的测序结果第46页
        3.4.4 荧光定量扩增动力学曲线第46-47页
        3.4.5 荧光定量标准曲线第47-49页
        3.4.6 荧光定量融解曲线第49页
        3.4.7 不同部位脂肪组织比较结果第49-50页
        3.4.8 添加β-羟丁酸、瘦素和胰岛素对Leptin mRNA表达的影响第50-53页
        3.4.9 添加β羟丁酸、瘦素和胰岛素对Ob-Rb mRNA表达的影响第53-55页
        3.4.10 添加β羟丁酸、瘦素和胰岛素对Ob-Rc mRNA表达的影响第55-58页
    3.5 讨论第58-61页
        3.5.1 β-羟丁酸对不同脂肪组织Leptin及其受体mRNA表达的作用第58-59页
        3.5.2 瘦素对不同脂肪组织Leptin及其受体mRNA表达的作用第59页
        3.5.3 胰岛素对不同脂肪组织Leptin及其受体mRNA表达的作用第59-61页
结论第61-62页
参考文献第62-67页
附录第67-69页
致谢第69-70页
攻读学位期间发表论文的情况第70页

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