研究生导师及课题指导小组成员介绍 | 第5-9页 |
摘要 | 第9-13页 |
Abstract | 第13-16页 |
符号说明 | 第17-18页 |
引言 | 第18-22页 |
第一部分FeCl3诱导大鼠颈总动脉血栓制备CCI模型的探索 | 第22-32页 |
1 前言 | 第22页 |
2 实验材料 | 第22-24页 |
2.1 实验动物 | 第22页 |
2.2 试剂 | 第22-23页 |
2.3 试剂配制 | 第23页 |
2.4 主要仪器 | 第23-24页 |
3 实验方法 | 第24-26页 |
3.1 动物模型的建立及分组 | 第24-25页 |
3.2 神经行为学评分 | 第25页 |
3.3 Y迷宫训练 | 第25页 |
3.4 血栓称重 | 第25页 |
3.5 苏木精-伊红(HE)染色 | 第25-26页 |
3.6 统计学分析 | 第26页 |
4 实验结果 | 第26-29页 |
4.1 各组动物存活率 | 第26页 |
4.2 动物模型神经功能评分和一般情况比较 | 第26-27页 |
4.3 大鼠Y迷宫训练结果比较 | 第27页 |
4.4 血栓重量比较 | 第27-28页 |
4.5 不同浓度FeCl3诱导颈总动脉形成血栓的情况 | 第28页 |
4.6 不同浓度FeCl3对脑组织CA3区的病理学影响 | 第28-29页 |
5 讨论 | 第29-32页 |
5.1 大鼠体重 | 第29-30页 |
5.2 FeCl3的配制 | 第30页 |
5.3 手术操作 | 第30页 |
5.4 模型建立 | 第30-32页 |
第二部分 肢体缺血后处理对慢性脑缺血大鼠LINGO-1、Akt信号通路及自噬的影响 | 第32-54页 |
1 前言 | 第32页 |
2 实验材料 | 第32-35页 |
2.1 实验动物 | 第32页 |
2.2 试剂 | 第32-34页 |
2.3 试剂配制 | 第34页 |
2.4 主要仪器设备 | 第34-35页 |
3 试验方法 | 第35-41页 |
3.1 CCI模型建立及分组 | 第35-36页 |
3.2 Y 迷宫测试 | 第36页 |
3.3 脑组织取材 | 第36页 |
3.4 血压、脑血流量、脑血管阻力检测 | 第36-37页 |
3.5 脑组织CA3区病理检学测——苏木素-伊红(HE)染色 | 第37页 |
3.6 qRT-PCR法 检测海马CA3区 组织中AktmRNA、LC3-Bm RNA、Beclin-1m RNA、LINGO-1mRNA的变化 | 第37-38页 |
3.7 Western blotting(WB)法检测海马CA3区组织中Akt、p-Akt308、LC3-B、Beclin-1、LINGO-1 蛋白表达 | 第38-40页 |
3.8 免疫组织化学法(IHC)检测海马CA3区组织中p-Akt308、LC3-B、Beclin-1、LINGO-1 蛋白表达 | 第40-41页 |
3.9 统计学分析 | 第41页 |
4 实验结果 | 第41-50页 |
4.1 LIP对CCI大鼠学习记忆能力的影响 | 第41-42页 |
4.2 LIP对大鼠血压、脑血流量、脑血管阻力的影响 | 第42-43页 |
4.3 LIP对大鼠脑组织CA3区病理学的影响 | 第43-44页 |
4.4 LIP对脑组织中Akt、p-Akt308、LC3-B、Beclin-1、LINGO-1 表达的影响-WB | 第44-46页 |
4.5 LIP对脑组织中p-Akt308、LC3-B、Beclin-1、LINGO-1 表达的影响-IHC. 29 | 第46-47页 |
4.6 LIP对脑组织中AktmRNA、LC3-BmRNA、Beclin-1mRNA、LINGO-1mRNA表达的影响-qRT-PCR | 第47-50页 |
5 讨论 | 第50-54页 |
结论 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-60页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第60-62页 |
致谢 | 第62页 |