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番茄青枯雷尔氏菌无致病力菌株筛选及对番茄青枯病的室内控病研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
缩略词表第8-11页
1 前言第11-12页
2 文献综述第12-18页
    2.1 植物细菌性青枯病研究概况第12-13页
        2.1.1 青枯菌的分类地位第12页
        2.1.2 青枯菌的寄主范围第12页
        2.1.3 青枯菌的侵染途径第12-13页
    2.2 植物细菌性青枯病防治的研究概况第13-17页
        2.2.1 生物防治第13-16页
            2.2.1.1 无致病力菌株的利用第13页
            2.2.1.2 植物内生细菌的利用第13-14页
            2.2.1.3 拮抗细菌的利用第14-16页
            2.2.1.4 有益真菌的利用第16页
        2.2.2 基因工程在生物防治中的的应用第16-17页
        2.2.3 其他方法第17页
    2.3 植株对青枯病的抗病机制第17-18页
    2.4 研究目的和意义第18页
2 材料与方法第18-27页
    2.1 试验材料第18-20页
        2.1.1 植物材料第18-19页
        2.1.2 供试菌株第19页
        2.1.3 供试培养基第19页
        2.1.4 主要仪器第19页
        2.1.5 主要试剂第19-20页
    2.2 试验方法第20-27页
        2.2.1 培育供试苗第20页
        2.2.2 青枯雷菌的分离第20-21页
            2.2.2.1 刮取维管组织分离法第20-21页
            2.2.2.2 青枯菌菌脓分离法第21页
            2.2.2.3 青枯菌的保存第21页
        2.2.3 青枯菌致病性检测方法的测定第21-22页
        2.2.4 青枯雷尔氏强致病力菌株的变异第22-23页
            2.2.4.1 青枯雷尔氏菌弱化指数第22页
            2.2.4.2 继代培养对强致病力菌株转化的影响第22页
            2.2.4.3 在NB培养基上不同时间培养对强致病力菌株转化的影响第22-23页
            2.2.4.4 不同pH处理对强致病力菌株转化的影响第23页
            2.2.4.5 不同温度处理对强致病力菌株转化的影响第23页
        2.2.5 无致病力青枯病病菌的平板拮抗筛选第23-24页
            2.2.5.1 初筛第23-24页
            2.2.5.2 复筛第24页
        2.2.6 温室盆栽控病试验第24-25页
        2.2.7 青枯菌侵染动态研究第25-26页
            2.2.7.1 青枯菌在番茄根中侵染情况研究第25页
            2.2.7.2 青枯菌在番茄茎中侵染情况研究第25-26页
            2.2.7.3 青枯菌在番茄叶中侵染情况研究第26页
        2.2.8 无致病力青枯病病菌诱导番茄产生抗病性的生理生化变化第26-27页
            2.2.8.1 接种处理第26页
            2.2.8.2 酶活的测定第26-27页
        2.2.9 试验数据分析第27页
3 结果与分析第27-51页
    3.1 青枯菌的分离第27页
    3.2 青枯菌致病性检测方法的测定第27-28页
    3.3 强致病力菌株的确定第28页
    3.4 强致病力菌株变异的研究第28-32页
        3.4.1 继代培养对强致病力菌株转化的影响第28-29页
        3.4.2 在NB培养基上不同时间培养对强致病力菌株转化的影响第29-30页
        3.4.3 不同pH处理对强致病力菌株转化的影响第30-32页
        3.4.4 不同温度处理对强致病力菌株转化的影响第32页
    3.5 无致病力青枯病病菌的平板拮抗筛选第32-34页
    3.6 温室盆栽控病试验第34-37页
    3.7 青枯菌侵染动态研究第37-42页
        3.7.1 青枯菌在番茄根中侵染情况情况第37-38页
        3.7.2 青枯菌在番茄茎中侵染情况情况第38-40页
        3.7.3 青枯菌在番茄叶中侵染情况情况第40-42页
    3.8 无致病力青枯病病菌诱导番茄产生抗病性的生理生化变化第42-51页
        3.8.1 过氧化物酶(POD)的活性测定第42-44页
            3.8.1.1 植株根中过氧化物酶(POD)的活性测定第42-43页
            3.8.1.2 植株茎中过氧化物酶(POD)的活性测定第43-44页
            3.8.1.3 植株叶中过氧化物酶(POD)的活性测定第44页
        3.8.2 多酚氧化酶(PPO)的活力测定第44-46页
            3.8.2.1 植株根中多酚氧化酶(PPO)的活性测定第44-45页
            3.8.2.2 植株茎中多酚氧化酶(PPO)的活性测定第45-46页
            3.8.2.3 植株叶中多酚氧化酶(PPO)的活性测定第46页
        3.8.3 植株中超氧化物岐化酶(SOD)的活性测定第46-49页
            3.8.3.1 植株根中超氧化物岐化酶(SOD)的活性测定第46-47页
            3.8.3.2 植株茎中超氧化物岐化酶(SOD)的活性测定第47-48页
            3.8.3.3 植株叶中超氧化物岐化酶(SOD)的活性测定第48-49页
        3.8.4 植株中过氧化氢酶(CAT)的活性测定第49-51页
            3.8.4.1 植株根中过氧化氢酶(CAT)的活性测定第49-50页
            3.8.4.2 植株茎中过氧化氢酶(CAT)的活性测定第50-51页
            3.8.4.3 植株叶中过氧化氢酶(CAT)的活性测定第51页
4 讨论与结论第51-55页
    4.1 青枯菌的分离方法第51页
    4.2 青枯雷尔氏强致病力菌株的变异第51-53页
    4.3 无致病力菌株的平板拮抗筛选第53页
    4.4 青枯菌侵染动态第53-54页
    4.5 无致病力菌株对酶活的影响第54-55页
5 小结第55-57页
参考文献第57-63页
致谢第63-64页
附图(Plate)第64-67页
硕士期间发表的论文第67页

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