| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 缩略词表 | 第14-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-31页 |
| 1.1 光合同化物在果实内的运输与分配 | 第17-21页 |
| 1.1.1 同化物运输组织——韧皮部SE-CC复合体的结构 | 第17-18页 |
| 1.1.2 同化物运输的途径和形式 | 第18-21页 |
| 1.2 果实内糖积累的生理基础 | 第21-24页 |
| 1.2.1 碳水化合物代谢 | 第21-22页 |
| 1.2.2 蔗糖-己糖的交替转化 | 第22-23页 |
| 1.2.3 果实内糖的转运与积累 | 第23-24页 |
| 1.3 果实内糖积累的调控 | 第24-26页 |
| 1.3.1 糖运输过程的调节 | 第24-25页 |
| 1.3.2 糖信号与糖的积累 | 第25-26页 |
| 1.3.3 糖积累的调控策略 | 第26页 |
| 1.4 植物蔗糖转运蛋白及其功能调节 | 第26-31页 |
| 1.4.1 蔗糖转运蛋白与SUTs家族 | 第26-27页 |
| 1.4.2 蔗糖转运蛋白的定位 | 第27-28页 |
| 1.4.3 结语和展望 | 第28-31页 |
| 第二章 材料与方法 | 第31-49页 |
| 2.1 材料 | 第31页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第31页 |
| 2.1.2 化学试剂 | 第31页 |
| 2.2 方法 | 第31-49页 |
| 2.2.1 果实生长发育动态 | 第31页 |
| 2.2.2 果实内可溶性糖的测定 | 第31-33页 |
| 2.2.3 糖代谢相关酶的提取及活性分析 | 第33-34页 |
| 2.2.4 果实维管束分布的显微观察 | 第34-35页 |
| 2.2.5 电镜超微制片 | 第35-36页 |
| 2.2.6 胞间连丝密度的测定 | 第36页 |
| 2.2.7 CFDA标记 | 第36-37页 |
| 2.2.8 梨果实糖积累相关的糖转运蛋白基因的克隆 | 第37-46页 |
| 2.2.9 梨果实糖转运蛋白PySUT1、PySOT2基因的qRT-PCR表达分析 | 第46-47页 |
| 2.2.10 果实ATPase的超微细胞化学定位 | 第47-48页 |
| 2.2.11 统计分析 | 第48-49页 |
| 第三章 结果与分析 | 第49-103页 |
| 3.1 梨果实生长发育动态 | 第49-50页 |
| 3.2 果实内糖积累规律 | 第50-55页 |
| 3.2.1 果实中可溶性糖组分的测定 | 第50-52页 |
| 3.2.2 果实中可溶性糖的绝对含量和相对含量的消长变化特点 | 第52-54页 |
| 3.2.3 果实成熟前后的味感值比较 | 第54-55页 |
| 3.3 梨果实蔗糖代谢相关酶活性变化特性 | 第55-57页 |
| 3.4 果实可溶性糖及其与代谢相关酶活性的关系 | 第57-60页 |
| 3.4.1 果实中可溶性糖组分的相关性分析 | 第57-58页 |
| 3.4.2 果实可溶性糖与蔗糖代谢相关酶活性的相关性分析 | 第58-60页 |
| 3.5 果实发育过程中维管束韧皮部细胞的超微结构变化 | 第60-75页 |
| 3.5.1 梨果实形态结构及维管束分布的显微观察 | 第60-63页 |
| 3.5.2 梨果实发育过程中韧皮部SE-CC复合体及周围薄壁细胞的超微结构变化 | 第63-75页 |
| 3.6 梨果实中SE/CC复合体与周围薄壁细胞共质体隔离的发现 | 第75-79页 |
| 3.6.1 韧皮部SE/CC复合体及其周围薄壁细胞间的胞间连丝密度 | 第75页 |
| 3.6.2 CFDA始终被限制在梨果实维管束韧皮部内 | 第75-79页 |
| 3.7 梨果实蔗糖转运蛋白基因的克隆及表达 | 第79-92页 |
| 3.7.1 梨果实总RNA的质量检测 | 第79-80页 |
| 3.7.2 梨果实蔗糖转运蛋白基因cDNA保守片段的克隆 | 第80页 |
| 3.7.3 梨果实PySUT1基因同源片段的3'-RACE、5'-RACE及基因全长的扩增 | 第80-82页 |
| 3.7.4 梨果实蔗糖转运蛋白基因的获得及其序列分析 | 第82页 |
| 3.7.5 梨果实PySUT1基因编码氨基酸序列同源性和系统进化树分析 | 第82-87页 |
| 3.7.6 梨果实蔗糖转运蛋白质跨膜结构域的预测与分析 | 第87-88页 |
| 3.7.7 梨果实蔗糖转运蛋白亚细胞定位和导肽的预测与分析 | 第88-89页 |
| 3.7.8 梨果实蔗糖转运蛋白质二级和三级结构预测 | 第89-91页 |
| 3.7.9 梨果实蔗糖转运蛋白基因的qRT-PCR表达分析 | 第91-92页 |
| 3.8 梨果实山梨醇转运蛋白基因的克隆及表达 | 第92-99页 |
| 3.8.1 梨果实山梨醇转运蛋白基因cDNA保守片段的克隆 | 第92页 |
| 3.8.2 梨果实山梨醇转运蛋白基因cDNA的3'-RACE和5'-RACE | 第92-93页 |
| 3.8.3 梨果实山梨醇转运蛋白基因的序列分析 | 第93-94页 |
| 3.8.4 梨果实山梨醇转运蛋白基因编码氨基酸序列的同源性和系统进化树分析 | 第94-97页 |
| 3.8.5 梨果实PySOT2蛋白质跨膜结构域的预测与分析 | 第97-98页 |
| 3.8.6 梨果实山梨醇转运蛋白基因PySOT2的qRT-PCR表达分析 | 第98-99页 |
| 3.9 梨果实同化物卸载区ATPase的超微细胞定位 | 第99-103页 |
| 第四章 讨论 | 第103-115页 |
| 4.1 梨不同品种果实糖积累方式差异的原因 | 第103-108页 |
| 4.1.1 梨不同品种的糖积累方式存在的差异 | 第103-104页 |
| 4.1.2 高蔗糖型品种与低蔗糖型品种的差异原因 | 第104-107页 |
| 4.1.3 在梨果实可溶性糖积累过程中山梨醇的潜在角色 | 第107-108页 |
| 4.2 梨果实发育过程中韧皮部细胞超微结构存在显著变化 | 第108-109页 |
| 4.3 梨果实发育过程中同化物卸载采取质外体途径 | 第109-111页 |
| 4.4 梨果实内糖积累依赖于糖的跨膜转运系统 | 第111-115页 |
| 第五章 结论与创新点 | 第115-117页 |
| 5.1 全文结论 | 第115页 |
| 5.2 创新点 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-127页 |
| 攻读博士学位期间发表(待发表)的论文 | 第127-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
