| 致谢 | 第11-12页 |
| 摘要 | 第12-15页 |
| ABSTRACT | 第15-17页 |
| 英文缩略词表(ABBREVIATION) | 第18-20页 |
| 第一章 文献综述 | 第20-48页 |
| 1 肠道菌群的研究进展 | 第20-31页 |
| 1.1 肠道微生物分类和分布 | 第20-22页 |
| 1.2 肠道菌群的功能 | 第22-27页 |
| 1.3 肠道菌群调节粘膜免疫的主要机制 | 第27-30页 |
| 1.4 粪菌移植(fecal microbiota transplantation,FMT) | 第30-31页 |
| 2 益生芽孢杆菌 | 第31-34页 |
| 2.1 益生菌简介 | 第31-32页 |
| 2.2 饲用芽孢杆菌 | 第32页 |
| 2.3 芽孢杆菌的作用机理 | 第32-34页 |
| 3 沙门氏菌 | 第34-39页 |
| 3.1 沙门氏菌简介 | 第34-35页 |
| 3.2 沙门氏菌与肠道菌群 | 第35-36页 |
| 3.3 沙门氏菌感染与肠道免疫反应 | 第36-39页 |
| 4 巨噬细胞 | 第39-46页 |
| 4.1 巨噬细胞分型及其相应的免疫功能 | 第39-43页 |
| 4.2 肠道巨噬细胞 | 第43-44页 |
| 4.3 细菌和巨噬细胞极化 | 第44-46页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第46-48页 |
| 第二章 解淀粉芽孢杆菌BASC06对感染鼠伤寒沙门氏菌小鼠的保护作用 | 第48-81页 |
| 1 引言 | 第48页 |
| 2 试验材料 | 第48-51页 |
| 2.1 试验菌株 | 第48页 |
| 2.2 试验动物 | 第48-49页 |
| 2.3 试验试剂 | 第49-51页 |
| 3 试验方法 | 第51-59页 |
| 3.1 细菌的培养与准备 | 第51页 |
| 3.2 益生菌BaSC06的饲喂 | 第51-52页 |
| 3.3 FITC标记BaSC06 | 第52页 |
| 3.4 益生菌BaSC06在肠道中的分布实验 | 第52页 |
| 3.5 鼠伤寒沙门氏菌诱导小鼠肠炎疾病模型的建立 | 第52-53页 |
| 3.6 BaSC06对ST的拮抗和抑制作用 | 第53页 |
| 3.7 小鼠样品的采集 | 第53-54页 |
| 3.8 组织分离,流式细胞术检测和细胞分析 | 第54-55页 |
| 3.9 细菌移位 | 第55页 |
| 3.10 空、回、盲、结肠组织的病理切片制作 | 第55-56页 |
| 3.11 组织病理学观察 | 第56页 |
| 3.12 透射电镜(TEM)检测肠道的微观形态 | 第56-57页 |
| 3.13 总RNA的提取cDNA的制备及RT-PCR | 第57-58页 |
| 3.14 肠组织细胞因子ELISA测定 | 第58页 |
| 3.15 血清中细胞因子含量测定 | 第58页 |
| 3.16 肠道组织免疫荧光检测 | 第58-59页 |
| 3.17 组织切片免疫组化染色和图像分析 | 第59页 |
| 4 统计学分析 | 第59页 |
| 5 结果与分析 | 第59-76页 |
| 5.1 BaSC06在肠道内的分布 | 第59-61页 |
| 5.2 BaSC06对健康小鼠的影响 | 第61-63页 |
| 5.3 BaSC06对小鼠抵抗ST感染的影响 | 第63-76页 |
| 6 讨论 | 第76-80页 |
| 6.1 BaSC06对正常小鼠的影响 | 第76页 |
| 6.2 BaSC06对小鼠抵抗ST感染的影响 | 第76-78页 |
| 6.3 BaSC06提高小鼠抵抗ST感染的机制 | 第78-80页 |
| 7 小结 | 第80-81页 |
| 第三章 解淀粉芽孢杆菌BASC06对巨噬细胞极化的影响 | 第81-100页 |
| 1 引言 | 第81页 |
| 2 试验材料 | 第81-83页 |
| 2.1 试验菌株 | 第81页 |
| 2.2 试验动物 | 第81页 |
| 2.3 实验细胞 | 第81-82页 |
| 2.4 试验试剂 | 第82-83页 |
| 2.5 主要仪器和设备 | 第83页 |
| 3 试验方法 | 第83-87页 |
| 3.1 小鼠骨髓源巨噬细胞培养及诱导 | 第83-84页 |
| 3.2 MTT检测细胞增殖及毒性 | 第84页 |
| 3.3 吞噬试验 | 第84页 |
| 3.4 胞内杀菌功能的检测 | 第84页 |
| 3.5 BaSC06对BMDM M1与M2型极化标志基因表达的检测 | 第84-85页 |
| 3.6 ST感染巨噬细胞 | 第85页 |
| 3.7 ST和BaSC06与巨噬细胞共培养 | 第85页 |
| 3.8 流式细胞术检测巨噬细胞表面分子CD16/32和CD206的表达 | 第85页 |
| 3.9 腹腔注射与腹腔巨噬细胞的分离 | 第85-86页 |
| 3.10 细胞过继回输 | 第86页 |
| 3.11 抗生素小鼠模型 | 第86-87页 |
| 3.12 盲肠免疫组织化学染色 | 第87页 |
| 4 统计学分析 | 第87页 |
| 5 结果与分析 | 第87-97页 |
| 5.1 BaSC06对RAW264.7细胞的安全浓度测定 | 第87-88页 |
| 5.2 BaSC06对小鼠巨噬细胞吞噬和胞内杀菌功能的影响 | 第88-89页 |
| 5.3 BaSC06对巨噬细胞极化相关基因表达的影响 | 第89-90页 |
| 5.4 BaSC06对巨噬细胞极化相关蛋白的影响 | 第90-91页 |
| 5.5 ST对巨噬细胞极化的影响 | 第91-92页 |
| 5.6 BaSC06对ST诱导的巨噬细胞极化的影响 | 第92-93页 |
| 5.7 BaSC06对腹腔巨噬细胞分型的影响 | 第93-94页 |
| 5.8 BaSC06诱导的巨噬细胞对ST的杀菌功能 | 第94-95页 |
| 5.9 BaSC06对抗生素模型小鼠抗ST感染和巨噬细胞极化的影响 | 第95-97页 |
| 6 讨论 | 第97-99页 |
| 6.1 BaSC06对巨噬细胞的吞噬杀菌功能和极化的影响 | 第97-98页 |
| 6.2 ST对巨噬细胞极化的调节 | 第98页 |
| 6.3 BaSC06对抗生素模型小鼠盲肠巨噬细胞极化的影响 | 第98-99页 |
| 7 小结 | 第99-100页 |
| 第四章 解淀粉芽孢杆菌BASC06调节的肠道菌群对巨噬细胞极化及沙门氏菌感染的影响 | 第100-114页 |
| 1 引言 | 第100页 |
| 2 试验材料 | 第100-101页 |
| 2.1 试验菌株 | 第100页 |
| 2.2 试验动物 | 第100页 |
| 2.3 试验试剂 | 第100-101页 |
| 2.4 主要仪器和设备 | 第101页 |
| 3 试验方法 | 第101-103页 |
| 3.1 盲肠内容物分析 | 第101-102页 |
| 3.2 菌群移植 | 第102-103页 |
| 3.3 肠道菌群和代谢产物刺激巨噬细胞 | 第103页 |
| 3.4 结肠体外培养 | 第103页 |
| 4 统计学分析 | 第103页 |
| 5 结果与分析 | 第103-110页 |
| 5.1 BaSC06对正常小鼠和ST感染小鼠肠道菌群多样性的影响 | 第103-106页 |
| 5.2 BaSC06对菌群移植后小鼠盲肠的保护作用 | 第106-107页 |
| 5.3 BaSC06对菌群移植后小鼠盲肠巨噬细胞极化的影响 | 第107-108页 |
| 5.4 肠道菌群对巨噬细胞极化的影响 | 第108-109页 |
| 5.5 肠道菌群通过刺激结肠调控巨噬细胞极化 | 第109-110页 |
| 6 讨论 | 第110-113页 |
| 6.1 BaSC06对盲肠微生物多样性的影响 | 第110-111页 |
| 6.2 菌群移植对肠道巨噬细胞极化和抗ST感染的影响 | 第111-112页 |
| 6.3 肠道菌群诱导巨噬细胞M2型极化的机制 | 第112-113页 |
| 7 小结 | 第113-114页 |
| 第五章 结论、创新点和研究展望 | 第114-115页 |
| 1 结论 | 第114页 |
| 2 创新点 | 第114页 |
| 3 研究展望 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-142页 |
| 作者筒介 | 第142页 |
