| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 前言 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 研究的背景及意义 | 第10页 |
| 1.2 煤炭脱硫的方法 | 第10-13页 |
| 1.2.1 煤炭中硫存在的类型 | 第10-11页 |
| 1.2.2 煤炭脱硫技术 | 第11-13页 |
| 1.3 生物脱无机硫的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.3.1 微生物脱无机硫的发展历史 | 第13页 |
| 1.3.2 脱硫微生物 | 第13-14页 |
| 1.3.3 煤炭生物脱硫原理 | 第14-17页 |
| 1.4 分子水平脱硫微生物的研究进展 | 第17-20页 |
| 1.4.1 脱硫基因的研究 | 第17-18页 |
| 1.4.2 脱硫酶的研究 | 第18-20页 |
| 1.5 微生物脱硫的应用前景 | 第20-21页 |
| 1.5.1 微生物脱硫在工业中的应用 | 第20页 |
| 1.5.2 存在的问题及解决方法 | 第20-21页 |
| 1.6 本课题的研究内容 | 第21页 |
| 1.7 技术路线图 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-30页 |
| 2.1 材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 样品来源 | 第22页 |
| 2.1.2 实验菌株 | 第22页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第22页 |
| 2.1.4 培养基 | 第22-23页 |
| 2.1.5 实验试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.6 PCR 反应体系与引物 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 菌种分离方法 | 第25页 |
| 2.2.2 脱硫菌的鉴定 | 第25-27页 |
| 2.2.3 分析测定方法 | 第27页 |
| 2.2.4 菌株 T.ferrooxidans L1 对 Fe~(2+)氧化条件的优化 | 第27-28页 |
| 2.2.5 全因子和响应面试验设计和分析 | 第28-29页 |
| 2.2.6 脱硫酶的研究 | 第29-30页 |
| 第三章 脱无机硫微生物的筛选与鉴定 | 第30-33页 |
| 3.1 Fe~(2+)浓度测定方法标准曲线的绘制 | 第30-31页 |
| 3.2 脱硫菌株的筛选及 Fe~(2+)氧化能力的测定 | 第31页 |
| 3.3 脱硫菌的鉴定 | 第31-32页 |
| 3.3.1 脱硫菌平板菌落及个体形态特征 | 第31页 |
| 3.3.2 16S rDNA 序列分析及系统发育树的构建 | 第31-32页 |
| 3.4 小结 | 第32-33页 |
| 第四章 脱硫菌 T.ferrooxidans L1 Fe~(2+)氧化特性的研究 | 第33-45页 |
| 4.1 菌株 T. ferrooxidans L1 生长曲线和氧化曲线 | 第33页 |
| 4.2 培养基组分对 T.ferrooxidansL1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第33-35页 |
| 4.2.1 碳源对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第33-34页 |
| 4.2.2 氮源对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第34-35页 |
| 4.2.3 Fe~(2+)浓度对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第35页 |
| 4.3 培养条件对 T.ferrooxidansL1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第35-39页 |
| 4.3.1 初始 pH 对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第35-36页 |
| 4.3.2 培养温度对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第36页 |
| 4.3.3 转速对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第36-37页 |
| 4.3.4 培养时间对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第37页 |
| 4.3.5 甘油浓度对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第37-38页 |
| 4.3.6 (NH4)2SO4浓度对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第38页 |
| 4.3.7 接种量对 T.ferrooxidans L1 氧化 Fe~(2+)性能的影响 | 第38-39页 |
| 4.4 全因子实验和响应面相结合的方法对 T. ferrooxidansL1 氧化 Fe~(2+)条件的优化 | 第39-44页 |
| 4.4.1 PB 实验设计处理及响应值 | 第39页 |
| 4.4.2 生物脱硫主要因子的筛选 | 第39-40页 |
| 4.4.3 RSM 优化模型的建立及分析 | 第40-42页 |
| 4.4.4 生物降解条件的响应面分析与优化 | 第42-44页 |
| 4.5 小结 | 第44-45页 |
| 第五章 相关脱硫酶酶学的研究与基因的克隆 | 第45-50页 |
| 5.1 APS 还原酶的粗提取与及酶学性质测定 | 第45-46页 |
| 5.1.1 APS 还原酶盐析浓度的选择 | 第45页 |
| 5.1.2 粗 APS 还原酶最适温度 | 第45-46页 |
| 5.1.3 粗 APS 还原酶最适 pH | 第46页 |
| 5.2 SIR 还原酶的粗提取与及酶学性质测定 | 第46-48页 |
| 5.2.1 SIR 还原酶盐析浓度的选择 | 第46-47页 |
| 5.2.2 粗 SIR 还原酶最适温度 | 第47页 |
| 5.2.3 粗 SIR 还原酶最适 pH | 第47-48页 |
| 5.3 T. ferrooxidansL1 中 APS 还原酶相关 Cys H 基因的克隆 | 第48-49页 |
| 5.3.1 T. ferrooxidans L1 总 DNA 的提取 | 第48-49页 |
| 5.3.2 T. ferrooxidans L1 中的 Cys H 目的基因克隆 | 第49页 |
| 5.4 小结 | 第49-50页 |
| 第六章 结论与展望 | 第50-51页 |
| 6.1 结论 | 第50页 |
| 6.2 展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 附录 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58-59页 |
| 导师评阅表 | 第59页 |
