| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 研究现状、成果 | 第11-12页 |
| 研究目的、方法 | 第12-13页 |
| 1 材料和方法 | 第13-28页 |
| 1.1 材料 | 第13-14页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.1.2 主要仪器和设备 | 第13-14页 |
| 1.1.3 主要药品与试剂 | 第14页 |
| 1.2 动物模型建立与分组 | 第14-15页 |
| 1.2.1 大鼠自体原位肝脏移植致海马损伤模型的建立 | 第14-15页 |
| 1.2.2 动物分组 | 第15页 |
| 1.3 标本采集 | 第15-16页 |
| 1.3.1 血清标本采集 | 第15页 |
| 1.3.2 病理学标本采集 | 第15-16页 |
| 1.3.3 基因组学标本采集 | 第16页 |
| 1.4 检测指标与方法 | 第16-28页 |
| 1.4.1 HE病理学染色 | 第16-17页 |
| 1.4.2 TNF-α 和IL-6 的测定 | 第17页 |
| 1.4.3 MDA和SOD的测定 | 第17-20页 |
| 1.4.4 S100β 和NSE的测定 | 第20-21页 |
| 1.4.5 NO的测定 | 第21-22页 |
| 1.4.6 JAK2、STAT3和iNOS mRNA的测定 | 第22-25页 |
| 1.4.7 Western blot蛋白测定 | 第25-27页 |
| 1.4.8 TUNEL凋亡细胞检测 | 第27-28页 |
| 1.5 统计学处理 | 第28页 |
| 2 结果 | 第28-34页 |
| 2.1 海马组织病理结果 | 第28页 |
| 2.2 血清细胞因子TNF-α 和IL-6 浓度变化 | 第28-29页 |
| 2.3 海马组织中MDA含量和SOD的活性 | 第29-30页 |
| 2.4 血清S100β 和NSE含量 | 第30-31页 |
| 2.5 海马组织中NO活性的变化 | 第31页 |
| 2.6 JAK2、STAT3和i NOS mRNA的水平 | 第31-32页 |
| 2.7 海马组织p-JAK2和p-STAT3蛋白表达水平 | 第32-33页 |
| 2.8 海马组织凋亡结果 | 第33-34页 |
| 3 讨论 | 第34-37页 |
| 3.1 动物模型的建立 | 第34页 |
| 3.2 肝冷缺血再灌注致海马损伤的机制 | 第34-35页 |
| 3.3 丙泊酚的生物及药理作用 | 第35-36页 |
| 3.4 丙泊酚与缺血再灌注损伤 | 第36页 |
| 3.5 JAK/STAT信号通路与缺血再灌注损伤 | 第36-37页 |
| 4 小结 | 第37-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第45-46页 |
| 综述 缺血后处理在器官移植术中的研究进展 | 第46-53页 |
| 综述参考文献 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 个人简历 | 第54页 |
