缩略语表 | 第2-4页 |
摘要 | 第4-7页 |
SUMMARY | 第7-8页 |
前言 | 第13-14页 |
文献综述 | 第14-31页 |
1. 枸杞及根腐病研究进展 | 第14-19页 |
1.1 枸杞 | 第14页 |
1.2 枸杞病害研究进展 | 第14-16页 |
1.3 根腐病研究进展 | 第16-19页 |
2. 植物病理生理学研究进展 | 第19-27页 |
2.1 植物病原真菌与植物互作 | 第19页 |
2.2 植物防御酶的功能与作用机理 | 第19-24页 |
2.3 主要活性氧的功能与作用机理 | 第24-25页 |
2.4 植物酚类化合物与植物抗病 | 第25-26页 |
2.5 丙二醛(MDA)在蔬菜抗病性中的作用 | 第26页 |
2.6 可溶性蛋白和可溶性糖与植物抗病的关系 | 第26-27页 |
3. 病原菌侵染对植物互作光合作用研究进展 | 第27-31页 |
3.1 光合作用的一般机制以及影响光合作用的因素 | 第27-28页 |
3.2 叶绿素荧光的重要作用 | 第28页 |
3.3 病原物侵染改变光合作用 | 第28-29页 |
3.4 叶绿素荧光对病原微生物侵染的响应 | 第29-31页 |
第一篇 甘肃枸杞根腐病病原学研究 | 第31-53页 |
第一章 材料与方法 | 第31-37页 |
1. 材料 | 第31页 |
1.1 培养基 | 第31页 |
1.2 化学试剂 | 第31页 |
1.3 试验仪器 | 第31页 |
2. 方法 | 第31-37页 |
2.1 病害调查、病原分离及致病性测定 | 第31-32页 |
2.2 病原菌鉴定 | 第32-35页 |
2.3 病原菌生物学特性研究 | 第35-37页 |
第二章 结果与分析 | 第37-49页 |
1. 病害田间调查、病原分离及致病性测定 | 第37-39页 |
1.1 甘肃省枸杞根腐病调查及病原菌种类 | 第37-38页 |
1.2 致病性测定 | 第38-39页 |
2. 病原菌的鉴定 | 第39-43页 |
2.1 培养性状及形态特征 | 第39-41页 |
2.2 分子生物学鉴定 | 第41-43页 |
3. 主要病原菌离体培养条件研究 | 第43-49页 |
3.1 最适培养基的确定 | 第43-44页 |
3.2 温度对病原菌的影响 | 第44页 |
3.3 光照对病原菌的影响 | 第44-45页 |
3.4 pH对病原菌的影响 | 第45-46页 |
3.5 碳源对病原菌的影响 | 第46-47页 |
3.6 氮源对病原菌的影响 | 第47-49页 |
第三章 结论与讨论 | 第49-53页 |
1. 枸杞根腐病病原菌的分离纯化鉴定 | 第49页 |
2. 病原菌致病能力比较 | 第49-50页 |
2.1 土培条件下致病性测定结果 | 第49页 |
2.2 水培条件下致病性测定结果 | 第49-50页 |
3. 病原菌鉴定结果 | 第50页 |
4. 各菌种生物学特征研究 | 第50-53页 |
第二篇 枸杞根腐病对枸杞生理特性的影响 | 第53-76页 |
第一章 材料与方法 | 第53-60页 |
1. 材料 | 第53页 |
2. 方法 | 第53-60页 |
2.1 苗木培育的方法 | 第53页 |
2.2 供试苗木的选择 | 第53页 |
2.3 供试菌种的活化及增殖 | 第53页 |
2.4 接种F. oxysporum的方法 | 第53-54页 |
2.5 抗病能力的测定方法 | 第54页 |
2.6 样品采集的方法 | 第54页 |
2.7 样品指标测定的方法 | 第54-60页 |
第二章 结果与分析 | 第60-68页 |
1. 不同枸杞抗病能力的测定 | 第60页 |
2. 接种F. oxysporum后感抗枸杞主要活性氧物质的变化 | 第60-61页 |
2.1 接种F. oxysporum后感抗枸杞超氧阴离子自由基(O~-_2)含量变化 | 第60页 |
2.2 接种F. oxysporum后感抗枸杞超过氧化氢(H_2O_2)含量变化 | 第60-61页 |
3. 接种F. oxysporum后感抗枸杞丙二醛含量的变化 | 第61-62页 |
4. 接种F. oxysporum后感抗枸杞苯丙烷代谢途径的变化 | 第62-64页 |
4.1 接种F. oxysporum后感抗枸杞PAL活性变化 | 第62-63页 |
4.2 接种F. oxysporum后感抗枸杞总酚含量变化 | 第63页 |
4.3 接种F. oxysporum后感抗枸杞类黄酮含量变化 | 第63-64页 |
5. 接种F. oxysporum后感抗枸杞防御性酶类活性变化 | 第64-66页 |
5.1 接种F. oxysporum后感抗枸杞SOD活性变化 | 第64页 |
5.2 接种F. oxysporum后感抗枸杞POD活性变化 | 第64-65页 |
5.3 接种F. oxysporum后感抗枸杞CAT活性变化 | 第65页 |
5.4 接种F. oxysporum后感抗枸杞PPO活性变化 | 第65-66页 |
6. 接种F. oxysporum后感抗枸杞主要能量物质含量变化 | 第66-68页 |
6.1 接种F. oxysporum后感抗枸杞可溶性蛋白含量变化 | 第66-67页 |
6.2 接种F. oxysporum后感抗枸杞可溶性糖含量变化 | 第67-68页 |
第三章 结论与讨论 | 第68-76页 |
1. 不同枸杞的抗病性测定 | 第68页 |
2. 活性氧物质的变化与抗病性的关系 | 第68-69页 |
2.1 超氧阴离子自由基含量变化与抗病性的关系 | 第68页 |
2.2 过氧化氢(H_2O_2)含量变化与抗病性的关系 | 第68-69页 |
3. 丙二醛(MDA)含量的变化与抗病性的关系 | 第69页 |
4. 苯丙烷代谢途径与枸杞抗病性的关系 | 第69-71页 |
4.1 PAL活性变化与抗病性的关系 | 第69-70页 |
4.2 总酚含量变化与抗病性的关系 | 第70页 |
4.3 类黄酮含量变化与抗病性的关系 | 第70-71页 |
5. 防御性酶类活性变化与枸杞抗病性的关系 | 第71-74页 |
5.1 SOD活性变化与抗病性的关系 | 第71-72页 |
5.2 POD活性变化与抗病性的关系 | 第72页 |
5.3 CAT活性变化与抗病性的关系 | 第72-73页 |
5.4 PPO活性变化与抗病性的关系 | 第73-74页 |
6. 主要能量物质含量变化与抗病性的关系 | 第74-75页 |
6.1 可溶性蛋白含量变化与抗病性的关系 | 第74页 |
6.2 可溶性糖含量变化与抗病性的关系 | 第74-75页 |
7. 小结 | 第75-76页 |
第三篇 枸杞根腐对枸杞光合生理的影响 | 第76-89页 |
第一章 材料与方法 | 第76-78页 |
1. 材料 | 第76页 |
2. 方法 | 第76-78页 |
2.1 苗木培育的方法 | 第76页 |
2.2 供试苗木的选择 | 第76页 |
2.3 供试菌种的活化及增殖 | 第76页 |
2.4 接种F.oxysporum的方法 | 第76-77页 |
2.5 叶绿素测定方法 | 第77页 |
2.6 光合作用相关指标测定的方法 | 第77页 |
2.7 叶绿素荧光相关指标测定的方法 | 第77页 |
2.8 数据处理 | 第77-78页 |
第二章 结果与分析 | 第78-86页 |
1. 接种F.oxysporum对感抗枸杞叶绿素含量的影响 | 第78-79页 |
2. 接种F.oxysporum对感抗枸杞光合作用相关参数的影响 | 第79-83页 |
2.1 接种F.oxysporum对感抗枸杞净光合速率的影响 | 第79-80页 |
2.2 接种F.oxysporum对感抗枸杞蒸腾速率的影响 | 第80-81页 |
2.4 接种F.oxysporum对感抗枸杞气孔导度的影响 | 第81页 |
2.5 接种F.oxysporum对感抗枸杞胞间CO_2浓度以及气孔限制值的影响 | 第81-83页 |
3. 接种F.oxysporum对感抗枸杞叶绿素荧光相关参数的影响 | 第83-86页 |
3.1 接种F.oxysporum对感抗枸杞Fv/Fm的影响 | 第83页 |
3.2 接种F.oxysporum对感抗枸杞 ΦPSⅡ的影响 | 第83-84页 |
3.3 接种F.oxysporum对感抗枸杞Fv‘/Fm‘的影响 | 第84页 |
3.4 接种F.oxysporum对感抗枸杞qP的影响 | 第84-85页 |
3.5 接种F.oxysporum对感抗枸杞NPQ的影响 | 第85-86页 |
第三章 结论与讨论 | 第86-89页 |
1. 接种F.oxysporum对感抗枸杞叶绿体色素含量的影响 | 第86页 |
2. 接种F.oxysporum对感抗枸杞光合作用相关指标的影响 | 第86-87页 |
3. 接种F.oxysporum对感抗枸杞叶绿素荧光相关指标的影响 | 第87-89页 |
参考文献 | 第89-106页 |
致谢 | 第106-107页 |
导师简介 | 第107-108页 |
作者简介 | 第108页 |
发表论文 | 第108-109页 |